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兔抗人NDR2高效价抗血清的制备、纯化及鉴定.doc

1、兔抗人 NDR2 高效价抗血清的制备、纯化及鉴定作者:张文红 刘新平 王吉村 韩月恒 邓艳春 周洁 药立波 【关键词】 免疫血清 关键词: NDR2;基因,Myc 表达;免疫血清;亲和纯化;易感性与特异性 摘 要:目的 制备高效价的 NDR2 抗体. 方法 构建 pRset-A-ndr2,pGEX-4T-1-ndr2-a 和 pGEX-4T-1-ndr2-b 三种重组表达质粒,并分别在大肠杆菌中诱导表达相应的融合蛋白;用全长 GST-NDR2 蛋白免疫兔,然后用 GST-NDR2-A 和 GST-NDR2-B 片段加强免疫;对包涵体形式表达的6His-NDR2 进行初步的纯化;利用固定于硝酸纤

2、维素膜上的 NDR2 抗原亲和吸附纯化抗血清. 结果 经免疫得到了高效价的兔抗人 NDR2 多克隆抗血清,亲和纯化提高了 NDR2 抗体的特异性;免疫组化表明 NDR2 是一种胞浆蛋白. 结论 用全长 NDR2 蛋白免疫兔,再用片段加强免疫,可以提高蛋白的抗原性,制备得到高效价的抗体.纯化后的特异性 NDR2 抗体,为进一步研究 NDR2 的功能打下了必要的基础. Keywords:n-myc downsream regulator2;genes,myc;gene sensitivity and expression;immune sera;affinity purification;spec

3、ificity Abstract:AIM To obtain an anti-NDR2polyclonal anti-body.METHODS Full length of ndr2cDNA was cloned in-to pRset-A vector and two truncated sequences of ndr2were cloned into pGEX-4T-1vector respectively.The fusion pro-teins were expressed in E.coli and partially purified by inclu-sion body fra

4、ction.Immunization in rabbits with the whole NDR2protein was reinforced with two truncated fragments of NDR2twice.The anti-NDR2specific antibody was puri-fied by absorbing antiserum with NDR2antigen immobilized NC filter.RESULTS High titer of antiserum against NDR2was obtained in immunized rabbits a

5、nd the specificity to NDR2was increased after affinity purification.Immunohis-tochemical test with this antibody showed that NDR2is a cy-toplasmic protein.CONCLUSION Reinforcement with trun-cated NDR2proteins can strengthen the antigenicity of NDR2protein in rabbits.The specific NDR2antibody can be

6、ob-tained by NC filter affinity purification. 0 引言 Ndr(N-myc downstream regulated gene)家族是研究 N-myc 下游调节基因时从小鼠胚胎中发现的一组新基因.目前已报道的成员有 4 个:ndr1,ndr2,ndr3 和 ndr4,它们具有较高的同源性,但表达水平在组织发育阶段和分布上差异明显,具体功能还不清楚.人的 ndr2 是本室于1999 年从正常成人全脑 cD-NA 文库中最先发现并克隆得到.其染色体定位于 14q11.2,含有 16 个外显子,15 个内含子;mRNA 全长为 2024nt,编码含有 3

7、57 个氨基酸残基,M r 约 40000 的蛋白质. 深入研究 NDR2 在体内的组织细胞和亚细胞水平分布特点及其功能,需要高效价和高特异性的 NDR2 抗体.为此,我们在大肠杆菌中分别融合表达了全长 NDR2 蛋白和两个分别含 289 个氨基酸和 198 个氨基酸的 3末端的 NDR2 蛋白片段,并对全长的 6His-NDR2 做了初步纯化.在用全长NDR2 蛋白免疫兔后,我们尝试用两个片段 NDR2 蛋白加强免疫,期望能提高其抗原性;为进一步提高 NDR2 抗血清的特异性,我们还试着对抗血清做了亲和吸附纯化.高效价和高特异性的 NDR2 抗体的制备,将为 NDR2 功能的深入研究提供有力

8、工具和重要线索. 1 材料和方法 1.1 材料 重组质粒 pGEX-4T-1-ndr2 由本室构建,JM109,JM109DE3 菌种和 pGEX-4T-1,pRset-A 载体为本室保存;DOC(脱氧胆酸钠) 、SKL(十二烷基肌氨酸钠)等购于华美生物技术公司;DNA marker DL2000,PMD18-T 载体购于宝生物工程有限公司;ABTS、胶回收和质粒提取试剂盒为华舜生物技术公司产品;PCR 引物为赛百盛生物工程公司合成;成年新西兰兔(体质量 1.2kg)由第四军医大学动物实验中心提供;HRP 标记的羊抗兔二抗购自 Santa Cruz Biotechnology;Western

9、发光底物为 Pierce 产品.SABC 免疫组化试剂盒为武汉博士德生物工程有限公司产品. 1.2 方法 1.2.1 PCR 扩增和克隆 模板为 pGEX-4T-1-ndr2,截短的 NDR2 编码区大片段(ndr2-a)的 5端引物为:5cgggatccatgcaggaaatcattcagaac3;小片段(ndr2-b)5端引物为:5cgggatccatg-gattgggcagcccacaagc3.3端引物公用,为:5cggaattcaacaagggccattcaacaggagac3.PCR 反应参数为:945s;684min,35 个循环.PCR 产物经琼脂糖电泳,胶回收,克隆入 PMD1

10、8-T 载体.重组质粒(分别命名为 PMD18-T-ndr2-a 和 PMD18-T-ndr2-b)用 EcoRI 和 BamHI 酶切鉴定,含预期大小插入片段的重组质粒测序进一步验证. 1.2.2 表达载体的构建 用 EcoRI 和 BamHI 从 pGEX-4T-1-ndr2 重组质粒上切下 ndr2,并插入 pRset-A 载体;用同样两个酶从测序验证过的重组质粒 PMD18-T-ndr2-a 和 PMD18-T-ndr2-b 上切下两个插入片段,克隆入 pGEX-4T-1 载体.重组表达质粒用 EcoRI 和 BamHI 酶切鉴定,并对pRset-A-ndr2 测序验证. 1.2.3

11、融合蛋白的表达和初步纯化 pGEX-4T-1-ndr2,pGEX-4T-1-ndr2-a 和 pGEX-4T-1-ndr2-b 分别转化 E.coli JM109,pRset-A-ndr2 转化 E.coli JM109DE3 .用 200mL LB(含 amp)培养四种阳性重组单菌落,0.1mmol L-1 IPTG 诱导 4h.120g L-1 SDS-PAGE 分析表达结果.取 0.3g 表达 6His-NDR2 融合蛋白的菌体,悬于 3mL 缓冲液 A(50mmol L-1 Tris-HCl,PH7.9;0.5mmol L-1 ED-TA;50mmol L-1 NaCl;50g L-1

12、 甘油;0.5mmol L-1 DTT)中,冰浴超声裂菌 30s5 次;4,12000 g 离心10min;沉淀中加入 3mL 缓冲液 A 和 350L200g L-1 DOC,重悬,室温静置 10min,4,12000g 离心 10min,重复一次;包涵体沉淀加入 3mL 缓冲液 A 和 50L200g L-1 SKL,剧烈搅动使沉淀慢慢溶解,静置50min,4,12000g 离心 10min,弃沉淀.变性蛋白对缓冲液 A 于 4透析 24h,期间更换 3 次新鲜缓冲液,并充分搅拌. 1.2.4 兔抗人 NDR2 抗血清的制备 SDS-PAGE 分离 NDR2 融合蛋白,从胶上切下目的蛋白条

13、带,研碎,溶于生理盐水.用全长 GST-NDR2 蛋白初次免疫 5 只新西兰兔(背部皮下多点注射,后同) ,1mo 后用 GST-NDR2-A 和 GST-NDR2-B 混合加强免疫,以后每两周加强 1 次,于第 4 次加强免疫后 8d 取兔血清. 1.2.5 多克隆抗血清效价的检测 初步纯化的 6His-NDR2 蛋白以210-6 g L-1 的浓度包被 ELISA 板,间接 ELISA 法检测 NDR2 多克隆抗血清的效价,见文献6. 1.2.6 抗体的纯化和验证 将初步纯化的 6His-NDR2 融合蛋白约 1mg进行 SDS-PAGE 分离,再转移于硝酸纤维素滤膜(NC 膜)上,剪下抗

14、原条带,用 10mL50g L-1 的脱脂奶粉封闭 1h,加入 100L 抗血清,4平缓摇动过夜;于室温用 0.15mol L-1 NaCl 漂洗硝酸纤维素滤膜 20min,再用PBST 漂洗两次,20min 次-1 ;弃洗液,在滤膜上加 2mL 洗脱缓冲液(0.2mol L-1 甘氨酸,pH2.8;1mmol L-1 EG-TA) ,轻摇 15min,加入约110L1mol L-1 Tris 碱中和至 pH 接近中性.用增强化学发光蛋白免疫印迹法验证所纯化抗体的特异性,见文献6. 1.2.7 免疫组织化学染色 对人甲状腺组织行常规石蜡切片,用SABC 免疫组化试剂盒进行染色.一抗稀释度为 1

15、 1500;二抗为羊抗兔IgG,1 3000 稀释.未免疫兔血清代替一抗作为阴性对照.DAB 显色,常规脱水,透明,中性树脂封片. 2 结果 2.1 3 种表达载体的构建 从 pGEX-4T-1-ndr2 中扩增出了两个截短的 NDR2 编码区 ndr2-a 和 ndr2-b(大小分别为 867bp 和 594bp) ,并插入到 PMD18-T 载体中(Fig1) ,测序验证正确;成功将 ndr2 克隆入 pRset-A载体,测序验证正确;从 PMD18-T-ndr2-a 和 PMD18-T-ndr2-b 上将 ndr2-a和 ndr2-b 切下并克隆入 pGEX-4T-1 中(Fig2).

16、2.2 GST 融合蛋白的表达 加上 Mr 26000 的 GST 部分,全长 GST-NDR2 的 Mr 约 65000,两个截短的 NDR2 与 GST 的融合蛋白 Mr 分别约为58000,48000.经 IPTG 诱导,成功得到了融合表达的 GST-NDR2,GST-NDR2-A 和 GST-NDR2-B,其大小与预期相符(Fig3). 图 1 图 3 略 2.4 NDR2 多克隆抗血清的效价 免疫的 5 只兔所得抗血清效价均大于 1 6400,其中两个已达到 1 12000.而本室以前用仅全长 NDR2 免疫所得抗血清效价只有 1 200,这表明用全长 NDR2 抗原初次免疫兔后,再

17、用片段 NDR2 抗原加强免疫,可以提高 NDR2 蛋白的抗原性,从而得到高效价的多克隆抗血清. 2.5 Western blotting 检测 NDR2 抗体纯化结果 免疫得到的多克隆抗血清虽然效价很高,但有不可避免的非特异性.经过固定于硝酸纤维素膜上的 NDR2 抗原亲和吸附抗血清,得到了高特异性的 NDR2 抗体(Fig5). 2.6 免疫组化染色结果 在甲状腺组织滤泡细胞胞质内可见棕黄色阳性免疫反应颗粒(Fig6) ,而阴性对照不着色.说明 NDR2 蛋白定位于细胞质中,是一种胞质蛋白. 3 讨论 本室前期研究表明:ndr2 基因在人中枢神经系统的大脑皮质、白质和神经核中呈广泛高表达,

18、在与神经细胞同样属于终末分化细胞的唾液腺细胞和骨骼肌细胞中也呈高表达;而在具有分裂能力的骨髓干细胞和精细胞中表达量很低;在分裂增殖能力旺盛的 10 种肿瘤细胞(包括白血病、淋巴瘤、肺癌、结肠癌胶质瘤和腮腺癌)无表达,在胚胎的脑、心、肝、肾、肺等脏器的表达量明显低于成人相应器官.其表达量与器官的成熟程度呈正相关,而与细胞的增殖能力呈负相关.即成熟程度高、增殖能力低的细胞表达量高,成熟程度低、增殖能力强的细胞表达量低.这提示其很可能参与肿瘤的发生与发展.人的 ndr2 基因与小鼠的 ndr2 基因有 93%的同源性,在小鼠该基因也称为脑发育相关基因,推测其在脑组织内广泛高表达还可能与神经系统的发育

19、有关. 图 5 抗血清纯化前后的特异性分析 略 为研究 NDR2 的功能,本室曾用全长 GST-NDR2 进行抗血清的制备,但所得的抗血清效价仅有 1 200 左右,难以满足研究的需要.为了得到高效价的 NDR2 多克隆抗血清,在用全长 NDR2 抗原初次免疫兔后,我们尝试用两个截短的 NDR2 加强免疫,以提高 NDR2 蛋白的抗原性.在检测抗体效价时,我们改用 6His 融合的全长 NDR2 抗原包被 ELISA 板,以避免针对 GST 部分的抗体对多抗效价检测的影响.结果表明该方法对制备 NDR2多克隆抗体行之有效,可以提高抗体效价 10 倍左右.此外,实验表明6His-NDR2 在大肠

20、杆菌中的表达形式为包涵体,经过超声处理、脱氧胆酸钠洗涤,再用十二烷基肌氨酸钠变性 和复性,纯度可以大于 80%.是一种方便的 NDR2 蛋白的制备方法. 图 6 NDR2 蛋白免疫组化结果 略 为进一步得到高特异性的 NDR2 抗体,将复性的 6His-NDR2 蛋白经SDS-PAGE 分离,再转移于 NC 膜上,剪下抗原条带,依据亲和原理吸附从抗血清中纯化 NDR2 抗体.经 western blotting 检测,我们得到了单特异性的 NDR2 抗体.纯度和产量足以做 NDR2 的组织分布和功能等研究.我们实验室用该抗体做了几种组织的免疫组化染色,结果发现 NDR2 分布于细胞质中,是一种

21、胞质蛋白,为进一步研究 NDR2 的功能奠定了基础. 参考文献: 1Shimono A,Okuda T,Kondoh H.N-myc-dependent repression of ndr1,a gene identified by direct subtraction of whole mouse embryo cDNAs between wild type and N-myc mutant J.Mech Dev,1999;83(1-2):39-52. 2Okuda T,Kondoh H.Identification of new genes ndr2and ndr3which are re

22、lated to Ndr1/RTP/Drg1but show distinct tissue specificity and response to N-myc J.Biochem Biophys Res Commun,1999;266(1);208-215. 3Kalaydjieva L,Gresham D,Gooding R,Heather L,Baas F,de Jonge R,Blechschmidt K,Angelicheva D,Chandler D,Wors-ley P,Rosenthal A,King RH,Thomas PK.N-myc down-stream-regulat

23、ed gene1is mutated in hereditary motor and sen-sory neuropathy-Lom J.Am J Hum Genet,2000Jul;67(1):47-58. 4Zhou R H,Kokame K,Tsukamoto Y,Yutani C,Kato H,Miy-ata T.Characterization of the human NDRG gene family:A newly identified member,NDRG4,is specifically expressed in brain and heart J.Genomics,200

24、1Apr1;73(1):86-97. 5Zhao W,Tang R,Huang Y,Wang W,Zhou Z,Gu S,Dai J,Ying K,Xie Y,Mao Y.Cloning and expression pattern of the human NDRG3gene J.Biochim Biophys Acta,2001May28:1519(1-2):134-138. 6Deng YC,Yao LB,Liu XP,Su CZ.Exploring a New Gene Containing ACP Like Domain in Human Brain and Expression I

25、t in E.coli J.Shengwu Huaxue Yu Shengwu Wuli Jinzhan(Prog Biochem Biophys) ,2001;28(1):72-76. 7Deng YC,Yao LB,Liu XP,Nie XY,Wang JC,Zhang XG,Su CZ.Expression of Protein P40in E.coli and Primary Purifica-tion J.Zhongguo Shengwu Huaxue Yu Fenzi Shengwu Xue-bao(Acta Biochi Biophys Sinica) ,2001;17(1):128-130.

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