真空采血与生物安全.ppt

1、真空采血与生物安全,泰州市人民医院 朱学骏,真空采血系统,采用真空标准试管及双向采血针，取代了早期临床上习惯使用的玻璃试管及一次性注射器,早期临床上习惯使用一次性注射器采血后分别注入各试管内，如管内加有抗凝剂必须混匀，然后再送检验科检查，但是时有采血量不足或过多，选用抗凝剂不对或由于抗凝剂不够而发生凝块等现象，不但延误检测，而且造成检验误差，还有开放性试管，可带来污染，也是造成误差原因之一，给临床和病人带来不必要误导、损失 。更不利于生物安全管理。,真空采血系统,相对于老式采血法，真空采血管的优势有： 1 采血量准确 由于它是真空采血装置，试管内已抽掉按所需要采血量的空气，所以采血量非常准确。

2、抗凝管中的抗凝剂，与其采血量相配匹，不会因采血过量而发生凝块。,真空采血系统,2采血规范化 真空采血管有不同颜色的瓶塞，不同颜色代表不同用途，如黄色代表生化用的血清管，紫色头的用于血常规，浅蓝色盖子的试管用于凝血时间的测定，黑色用于血沉实验等，并有刻度线做为标识，一目了然不易出错，避免了因错用试管而影响检验的情况发生，其管子直径是一致的，其长短不同代表不同采血量。,真空采血系统,3安全性能好 真空采血管的安全头盖有效避免医务人员在采集和运送中接触血样，防止院内感染。另外真采血管采用强化玻璃或特种塑料制成，管子破损率极小。真空采血管还保证试管内壁干净，无菌 。,真空采血系统,4分离血清效果好 有

3、的真空采血管内预置有惰性分离胶，因此分离血清快而且多：真空采血管内均涂有硅酮，避免血细胞附壁，同时也防止离心时细胞破碎而使细胞内物质外溢至血清中，影响试验结果：真空采血管配合双向采血针使用，可有效避免因一次性注射器往试管中注入血液的压力过大而造成的溶血现象，有效地提高临床检验的准确性：双向采血针配有不同内径型号，以适合不同病人使用：其带有橡皮胶套的一端可多次插入试管而不发生渗漏，可一次静脉穿刺，采集多管标本，避免血液外溢给病人造成的心理恐慌，同时由于是全封闭操作，避免了环境污染，对防止交叉感染和保护医务人员自己起了一定的作用,2003 美国（CLSI）标准,第一：血培养管第二：血凝管第三：血清

4、管第四：肝素管第五：EDTA第六：糖酵解抑制剂,2005日本标准,1.培养血液用采血2.采集血清用采血3.柠檬酸采血4.肝素采血5.EDTA采血6.放入糖酵解抑制剂的采血,我国卫生行业标准WS/T225-2002临床化学检验血液标本的收集与处理中规定,如果一次采血要采取几个标本时，应推荐以下顺序采血：a、血培养管；b、无添加剂管；c、凝血试验管；d、有添加剂的管（不同添 加剂管按以下顺序采血：1、枸橼酸盐管；2、肝素管；3、EDTA管；4、草酸盐/氟化物管）。,推荐抽血顺序,采血针采血顺序：血培养瓶（厌氧优先）无添加剂管（红色，金黄色管）凝血试管（蓝色）其它有抗凝剂管（黑-绿-紫-灰）,推荐抽

5、血顺序,2.注射器采血顺序：为避免血液在注射器中停留时间过长，造成血液微小凝集，故采血顺序略有更改如下： 血培养瓶（厌氧优先）凝血试管（蓝色）其它有抗凝剂管（黑-绿-紫-灰）无添加剂管（红色，金黄色管）,注意事项,A 注入血液后注意摇匀，用力要适中，防止溶血。 B 注入血量要严格按照试管上标示容量。 C 不能将不同颜色管的血倒入其它颜色的管中，否则会导致错误结果。 D 针头不能接触试管壁，以免接触抗凝剂，导致错误结果。,真空采血系统,采血穿刺连接器,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,真空采血系统,1临床

6、检验标本采集与处理1.1病人准备标本采集前病人的状态对检验结果会有一定的影响，因此，各种不同检测项目对标本采集前病人的状态有不同的要求。如：血脂测定须病人禁食12-14h后采血（否则出现脂血）；避免饮酒，避免服用有影响的药物，除某些必须按时服用药外，尽量将其他药物移到采集后再服用。情绪紧张会使血糖升高；吗啡、可卡因可使淀粉酶升高；吃香蕉能使尿液5-羟吲哚乙酸升高等。做粪便隐血试验前3 d，病人禁食动物血、肉、肝脏及富含叶绿素食物、铁剂、中药，以免假阳性反应。病人留取尿液和粪便时，避免混入其他血液，如月经血液等。留取粪便要新鲜且留在干净的器具内。做24 h尿蛋白，要告知病人准确留取24 h尿液，

7、然后及时送检。所以在病人要做某些化验检查之前，必须嘱咐病人做好相应的准备。,1临床检验标本采集与处理,1.2多项检测同时采血时应按下列顺序采血（1）血培养（污染？） 。（2）无添加剂管（红色）。（3）凝血管（蓝色）。（4）有添加剂管的顺序为：枸橼酸盐管（黑色）。肝素管。（绿色）EDTA管（紫色）。草酸盐/氟化钠管 切忌由于采血量的问题，不同试管间相互合并！,1临床检验标本采集与处理,1.3实验室接受标本后的处理应注意以下事项（1）时间：实验室接受标本后应尽快予以分类和离心。促凝标本可采血后5-15min尽早处理；抗凝标本可采血后立即离心；非抗凝（无促凝）标本采血30-60min后离心；抗凝全血

8、标本（测Li、Zn、原孢菌素）可以不离心。（2）温度：一般标本为室温（最好是22-25）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持2-8直到温度控制离心。（3）采血管放置：应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。（4）采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变，影响结果，如可使PH、Ca2+增高，使ACP减低；封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.1血常规检验标本 一般用EDTA-2K（EDTA-K2-2H2O）1.5-2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管）采血。 1、采血后立即上下颠倒混匀5-6次，不可用力振荡。 2、应按抗凝管刻度准确采血。 3、

9、采血后应尽快送检（需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超2hWBC形态会发生改变）。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.2红细胞沉降率（血沉）测定标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管）采血。 1、采血后应立即上下颠倒混合5-6次。 2、准确采血至刻度线，抗凝剂：全血=1：4。 3、采血后应尽快送检必须2h内检测。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.3凝血（ PT、APTT 、 TT 、 FBG 、 DD ）检测标本 静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L，抗

10、凝剂：全血=1：9）。1、空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子活化，导致PT延长）。2、采血时患者应保持平静状态30min以上，剧烈运动可使因子活化，APTT明显缩短。3、必须准确采血至刻度线。4、采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝快。5、采血后应尽快送检必须2h内检测。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.4血型与血交叉标本 一般采用EDTA-2K抗凝血。1、最好血型与血交叉各采一管血（要求保留血样）。2、采血量分别为1.0ml和1.0-2.0ml。3、采血后立即上下颠倒混匀5-6次。4、再次配血必须重新采血。多次输血者建议检测血型抗体。,EDTA-K3与EDTA-K

11、2有什么区别?血常规的参考方法用的是哪个抗凝剂？,两个都可以。EDTA-K2、EDTA-K3两种抗凝剂在相同条件下对血细胞常规分析的影响差异无显著性，两种抗凝方法在应用于血细胞分析时相当。K2 血液时间不可以太久，不然测出来不标准。K3这方面相对好一点，而且测得比较全面，正常只是血常规得话用K2较多，主要是看个人需要查那些而定。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5生化、免疫检测标本 2.5.1免疫：静脉采集非抗凝血（红色） 2.5.2生化： 静脉采集抗凝血（绿色）、（黄色） 2.5.3生化、免疫不能合并一管（根据各科室的专业设置而定）,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5

12、.4不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，以避免由此影响结果的准确性，血液标本收集后，都必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。从血液标本采集开始，必须在2h内将全血处理为血清或血浆。,临床常用检验项目血标本采血的注意事项,（1）血清（非抗凝血）：采血后标本必须颠倒混合5-6次,15-25(室温)15-30min后可自行完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块；冷藏标本凝集较慢，加促凝剂时凝集加快。,临床常用检验项目血标本采血的注意事项,（2）血浆（抗凝血）：应采用抗凝血采血，采血后立即颠倒混合5-6次，采血后数分钟内可离心分离血浆。,临床常用检验项目血标本采血的注意事

13、项,（3）冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分的（抑制细胞代谢），标本于2-8冷藏（标本采集后立即置冰或冰水混合物中，冷藏必须充分）；标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得2h。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5.5多项化学检测一般可采1管血。肝功能、肾功能、电解质、血糖、血脂等可以与特种蛋白等检测合并一管采血（绿色）。病原四项、病毒组套、自身免疫等可以合并一管采血（红色）。糖尿病三项检验必须加采一管（紫色）,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5.6采血量视检查项目多少不同而异，单

14、管通常为3.0-5.0ml。2.5.7如果检测项目不是很多，生化和免疫也不能合并一管血。防止检测生化时污染，影响免疫检测结果。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5.8代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未分离情况下血标本中GLU，22-25稳定24h，2-8稳定48h；氟化钠不适用新生儿及儿童的GLU测定（因儿童PCV高，细胞糖酵解难以控制）；氟化钠-麝香草酚混合剂不适合酶学检测（因氟化钠-麝香草酚混合剂能抑制酶活性）；甲醛-草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。(5)离心标本的准备：不主张用小棍强行剥离凝血块（诱发溶血）；必须剥离时应动作轻柔；真空

15、采血管应一直保持封闭垂直位置直到离心取出血清或血浆。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5.9关于标本离心（指标本处于离心机里的一段时间）：（1）离心时间为5-10min；相对离心力（RCF）不大于2200g。（2）温度控制离心：离心时产热，不利于分析物稳定。温度依赖性分析物（ACTH环腺苷酸儿茶酚胺等）离心温度应控制在4；无特殊温度要求的分析物离心温度在20-22冷藏运送标本应利用温度控制离心机离心。（3）再离心：最好一次完成标本离心。普通采血管二次离心时必须在首次离心后短时间内完成。,2临床常用检验项目血标本采血的注意事项,2.5.10离心后标本处理（指标本离心后和用于检测的血清

16、或血浆被取出一定量之前）（1）血清/血浆与接触的细胞/凝块应于采集后2h内尽快分离。（2）分离出的血清或血浆的储存：8h内可以储藏于228h以上储藏于2-8，48h以上储藏于-20；标本不可反复冻融（只能一次，且不可储藏于无霜冰箱）；分离胶上面的血清或血浆，可保存2-5天；用非凝胶分离物质时，离心后必须立即移开血清或血浆；血清或血浆必须密闭保存（置于带塞或封口的试管中）,如何防止真空采血管血流逆流back flow）,为什么能引起血液逆流：真空采血管的“真空”是指完全无空气的状态，低于大气压态。真空采血管其压力（负压）的增减是根据采血量而设置的。当扎紧压脉带时，血管内压上升。采血针进入肘静脉后

17、血液流入负压状态真空采血管内。预量负压耗尽采血结束，此时，血管内压真空采血管内压！采血终了，由于摘下压脉带，血管内压迅速低下重于回到常压，此时，血管内压真空采血管内压，有可能已泵取的血液再回到血管内的危险。,如何防止真空采血管血流逆流back flow）,防止血液逆流的采血方法：（一）采血时取下压脉带采取的血液避免接触采血针吐出的部分。（二）采血时如不要取下压脉带，采取的血液避免接触采血针吐出的部分，采血中让管座向下，避免采血针吐出的部分和己采取的血液接触,这样都可以避免back flow。,如何防止真空采血管血流逆流back flow）,防止血液逆流的采血方法：（一）采血时取下压脉带采取的血

18、液避免接触采血针吐出的部分，（二）采血时不要取下压脉带，采取的血液避免接触采血针吐出的部分（采血中使管座向下，避免采血针吐出的部分和己采取的血液接触),这样都可以避免back flow。,如何防止真空采血管血流逆流back flow）,蝶翼式采血双向针使用方法蝶翼双向采血针的塑胶管有较大的盲区部分，其优点能有效的阻止采血管内己采取的血向血管内逆流的危险性，其缺点盲区部分采血量不够准确。蝶翼采血针连接塑胶管最大限度的缩短减少采血量的误差。蝶翼采血针特别适用于婴幼儿和采血困难者,巧用一次性自动定量采血管采血,进针后无回血时，先把针头刺入采血管内，这样人为地使之提前形成一种负压，使针尖刺入血管壁的一

19、瞬间可见到回血，避免了重复穿刺给患者带来的痛苦，提高了穿刺成功率。,临床应用真空采血管采血不畅的补救处理,应用一次性采血针和一次性使用真空储血管给临床护理工作带来了极大的方便，它直接使血液流入真空管，污染机会减少，便于送检，可大大提高检验结果的准确性。操作者不直接接触血液，也为操作者提供了切实的安全保障。现将采血中遇到问题的处理方法介绍如下：,临床应用真空采血管采血不畅的补救处理,1 临床使用一次性真空管时，有个别真空管负压小，导致真空管进血缓慢或采集血量不足。处理方法：在静脉采血时备一支5ml注射器，一旦发现采血过程中负压不足可在真空管内抽一下负压，血液即可顺利进入真空管，这种方法可避免反复

20、穿刺而减轻患者的痛苦，也可节约时间和节省材料。,临床应用真空采血管采血不畅的补救处理,2 使用采血针时，采血针的软管内有残留血液。在采血前应事先考虑到软管内的残余血量带来的误差，操作过程中可先在真空管内采集需血量减去05ml的血液，再折叠采血针的软管，松开止血带，拔出针头，松开软管，使采血针软管内的血液流入真空管内则可获得所需血量。例如，测血型一般需血量是2ml，抽15ml血即可拔针，将采血针提起，使软管内血液流入真空管。这样，既保证了采血量的准确，又避免了采血针内残余血液造成污染。,临床应用真空采血管采血不畅的补救处理,3 有的患者血管干瘪，弹性差，血液回流较慢，止血带以下部分血液压力小。处

21、理方法：叮嘱患者用力握拳与放松交替进行，可利用肌肉收缩的作用使血液从组织回到血管内。,真空采血的诸多优点,1.常规方法制备血清, 由于血细胞和血清直接接触, 血细胞的代谢会消耗血清中的营养成分, 使血清成分不断发生变化。如不能及时进行检测, 血清中的各种生化指标会发生改变, 尤其是离子指标会次性真空采血管制备血清, 离心后管内从上向下依次为血清、分离胶、血细胞三层。分离胶在血细胞和血清之间形成胶状隔层, 阻断和减少了血细胞利用血清成分的通道, 使血清成分较长时间保持其稳定性。,真空采血的诸多优点,2.一次性真空采血管内含惰性凝胶物质和促凝剂, 对注入的血液有促凝血、促血清分离作用, 具有血清分

22、离快而且多、受温度影响小、分离血清可利用的特点。与普通管相比较不必水浴, 节约时间, 能很好的满足临床上对急诊标本的要求。,真空采血的诸多优点,3.使用一次性真空采血管, 可减少溶血现象的发生。因为在采血过程中血液是在小负压作用下沿着管壁慢慢注人采血管中, 红细胞不易被破坏同时采血管内均涂有的硅酮可以避免血细胞附壁, 防止离心时血细胞破碎, 不易溶血。这就减少了因溶血因素对检测结果产生的影响, 保证了临床上对测定结果准确性的要求。,真空采血的诸多优点,4.一次性真空采血管具有一次性安全粘合封口, 从血液注入采血管到分离完血清上机检测前, 管中的血液成分和外界环境始终处于隔离状态, 避免了血液被

23、污染, 另外血液在采集、运送、编号、离心过程中不易洒血, 有效的避免了医务人员手指接触血样, 防止了院内感染和环境污染。一次性真空采血管主要成材料, 是一种硬度较大的塑料管, 不怕摔, 易携带, 即使在10米高度自由落地也不会使血标本外溢, 便于标本的运送。并且在高速离心时从无漏血现象发生,真空采血的诸多优点,5.一次性真空采血管离心后可直接上自动化分析仪测定, 与普通试管经水浴、离心、加样器吸血清至一次性塑料小杯再上机检测的繁杂过程相比, 操作简便, 减少差错的出现。并且, 真空采血管使血液在采集、血清分离、上机检测、血样保存、废弃物处理的全过程都在同一只管中进行, 减少了一次性塑料用品废弃

24、物, 保护了检验科内外环境的污染, 提高了分析前的血清质量。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,1、止血带扎的时间过长、过紧，距离进针点过近。采血过程中止血带使用时间过长或过紧，从而干扰血流速度和流向，破坏体液和血细胞间的平衡，造成局部血液浓缩或激活凝血系统，造成标本溶血；如止血带系在伤口、结痂、伤痕处均可造成标本溶血。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,2、采血使用针头过小或用力拍打穿刺部位血管。穿刺抽血困难 患者由于有效循环血量减少，弹性差，静脉充盈不良，静脉塌陷，管腔变小，使血液流入负压管内缓慢，采血时间延长，也容易造成溶血。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,3、 采血技术欠佳 采血过程中静

25、脉穿刺处消毒液（如碘伏或酒精）未干即开始采血，可发生溶血；采血时定位或进针不准确，针尖在静脉中探来探去，造成血肿和血样溶血,静脉采血标本发生溶血的常见原因,4、采血时产生泡沫。原因有二种：一是由于针头固定不好，使针头斜面贴于血管壁上，使血液不畅，造成血液中混有泡沫；二是由于操作者没有按操作规程执行，不是将血沿试管壁缓慢注入，而是注入速度太快，造成泡沫与血液一同注入试管从而造成溶血。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,5、使用真空采血管时，真空管内负压过大，血流入速度过快，血细胞直接撞击真空管到使血细胞破裂造成溶血。常用抽血器具为真空负压管，负压过大或过小，均会造成溶血。负压相对较大，血液流入管底

26、速度过快过猛，造成红细胞相互撞击，导致红细胞破裂，标本溶血。采血过程中，由于负压不够、漏气或抗凝剂剂量不足，使得采血缓慢，血液间断地被吸入负压管内并混有气泡，造成溶血。吸入血量严重不足，真空采血管内仍存有相当量的真空负压而导致溶血。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,6、标本容器（真空采血管）不合格，或操作者过于用力太快地摇晃试管等也可造成溶血。真空采血管使用不当抗凝管、血沉管抽入血液后放置过久，没有马上均匀摇动造成溶血。如1人操作给患者同时抽数管血时，若先抽抗凝管，然后依次抽血清管，待抽血完毕后再来摇动抗凝管，此时血中的纤维蛋白原已凝固，用力的摇动抗凝管可人为造成血球破裂，发生溶血。在标本混匀

27、的过程中由于动作过于猛烈，血细胞破坏而导致溶血；采血针头口径过小，易引起溶血。,静脉采血标本发生溶血的常见原因,7、其它因素造成的标本溶血。对于血管不明显，采血难度大的病人，未采取有效措施防止溶血发生。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,1、为避免止血带扎的时间过长，扎止血带前应把核对工作做好。检查注射及收集血标本的容器是否完好，有无漏气，容器应外贴标签防止出错。止血带应松紧适宜，使血管充分充盈，在距离穿刺点6cm处扎止血带。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,2、选用适当型号的针头。一般成人使用7号真空采血针配套真空采血管采血，小儿采血可根据情况使用小型号针头。为患者寻找血管时不要用力拍打穿刺部

28、位血管，可用手轻轻来回按摩，使血管充分充盈后再穿刺采血。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,3、 使用国际标准真空采血管 使用合格的真空采血管，避免用负压过大、吸力过猛的特制真空采血管，以减少溶血机会。在采集血标本时，双向采血针尾部插入采血管后稍倾斜采血管，使其尾部针面贴近采血管的侧壁，血液沿管壁缓慢流下，避免红细胞直接撞击造成破裂。使用真空采血管采血时，应倾斜真空管，使血液沿管壁流入试管内，以减小负压过大对血细胞的撞击力。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,4、操作者应严格执行采血的有关操作规程。当穿刺成功后应固定好针头，保持血流通畅。（如用注射器采血完毕后把针头取下，将注射器乳头紧贴试管内壁，

29、使血液顺管壁缓慢流入试管内）。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,5、 采血顺序 建议采血顺序。（1）血培养。（2）凝血管。（3）无添加剂管。（4）有添加剂管的顺序为：枸橼酸盐管。肝素管。EDTA管。草酸盐/氟化钠管 最后一管血应在采血量还差0.30.5 ml时松止血带拔针，待软管内的血液全部流入试管后拔除管塞穿刺针，用干棉球压迫穿刺点5 min左右。采血后标本应立即送检，不要放置时间过久。,防止静脉采血标本发生溶血的对策,6、静脉采血是一种侵入性操作，一部分患者未采血就特别紧张，造成采血不畅，即使采出血来也会发生溶血。这时应耐心解释，安慰患者，转移注意力，让其放松心情，这样采血才会顺畅。对一些

30、血管较小，暴露不明显，采血难度大的患者，应认真为患者选择采血部位，必要时可稍作热敷或给予患者喝一些温开水。采血部位应尽量避开局部红肿炎性反应的部位，也要避开有疤痕及残疾的部位，严禁在输血输液处抽取血标本。对于自己确实把握不准时应请教经验丰富的同事帮忙采血，减低穿刺失效的风险，减轻患者的痛苦，对婴幼儿来说，更应慎重，以避免护患矛盾的发生。,常见不合格血样的原因分析及解决方法,一、凝血血样 指抗凝类采血管采集血样后出现不同程度的纤维蛋白析出或出现血凝块的标本。 1、显性凝血标本：血样中具有肉眼可见的血凝块或纤维蛋白团的标本称为显性凝血标本 2、隐性凝血标本：在全血血样中出现纤维蛋白的标本称为隐性凝

31、血标本,常见不合格血样的原因分析及解决方法,二、溶血血样 指血液标本在采集、抗凝、贮存、传输过程中出现红细胞、白细胞破裂，造成血细胞成分释放到血浆或血清中的标本。1、显性溶血标本：由于红细胞破裂、血红素释放而使血清泛红的标本称为显性溶血标本 2、隐性溶血标本：由于白细胞和血小板被破坏、使血清发生轻度混浊的标本称为隐性溶血标本（不论是显性溶血标本还是隐性溶血标本，均会改变血清或血浆的组分，从而影响检验结果的准确性。）,解决方法,溶血，一直是临床护士头疼的问题，因为标本溶血检验结果不正确或化验室拒做，这样会贻误诊断治疗，还会增加临床医务人员与化验室人员之间的误解。重新穿刺静脉采血，不但会增加病人痛

32、苦，破坏血管，还会增加费用支出。同时，还会增加临床护士的工作量。如何预防溶血标本，得到一个合格的标本呢？这个问题越来越引起临床护士的关注。,解决方法,原因分析及解决方法：A、血液采集量不足，采血管内剩余负压造成血细胞被压迫而破裂。按照采血管公称容量进行标本采集。 使用不足量标本时，采血完毕后开启管塞，放出管内多余真空。 气溶胶的生物安全要注意 B、用注射器采血转装于真空采血管时，未卸下注射器针头（血液在一定的压力下，通过狭小的针尖时受到挤压，血细胞变形或破裂） 当需要注射器采血并分装血样于真空采血管时，应卸下针头，打开采血管管塞，将血液沿管壁注入。 C、抗凝管在混匀抗凝剂时，混匀方式错误或混匀

33、幅度太大，使血样受到的冲击力过大，破坏血细胞 轻轻颠倒混匀5次以上。 D、使用干粉剂采血管时，混匀不及时，而血液与抗凝剂的接触面处溶解热和反应热过高导致细胞破裂。 及时颠倒混匀5次,解决方法,1.4. 采血组件连接不紧 采血前一定要先确定所有的连接都很紧密，连接不紧时空气可能进入血液中，造成气泡，导致溶血。 1.5. 避免血量不足 我们要按照采血目的的要求，采够足量的血，血量不足时，血液与添加剂的比率不正确，添加剂浓度过高时，某些添加剂会造成不同程度的溶血。,解决方法,1.6. 尽量不用注射器采血。注射器采血是造成溶血的主要原因，临床上应该禁止使用，尽量使用真空采血系统，防止溶血标本现象的发生

34、，如果在特殊条件下，必须用注射器采血，我们尽量做1.6.1 采血前先反复拉动针栓几次，让它松动。1.6.2 将针头和针筒的连接处拧紧。1.6.3 用3-10毫升的注射器，尽量避免用更大的容量的。1.6.4 尽量避免采血过程中抽拉针栓过度，因为过度抽拉会导致溶1.6.5 依靠真空的吸引力将血吸引进采血管中，不要推动针栓助力，因为强大的压力会损伤红细胞的。采血过程及已采集的血往试管中转移速度不宜太快，要适中。1.6.6 标本转移过程中使血沿着管壁流下，避免红细胞直落管底，其巨大的冲击力可能造成红细胞破坏。1.6.7采血与标本转移过程中，动作要敏捷，不要拖拉太慢，已采集在注射器中的血时间过长会凝固，

35、强硬推入试管中会引起溶血。,解决方法,2.采集血标本时，尽量避免在外周导管采集 如PICC置管，锁骨下中心静脉置管 或静脉留置针，尽量避免在这些导管处采血。因为血液经导管采集需要流经几个内径不同的地方。通过静脉导管采集的标本易发生溶血。 3.标本的处理技术 3.1.混匀试管，采集完毕后，立即颠倒混匀，不要振动或采用其他方法。 3.2标本的运送，注意颠簸震荡运送条件都会损伤红细胞。 3.3 采集后的标本在运送和储存时的温度要适宜，过高或过低都会破坏细胞膜。 4.对采血人员的技能培训,结束语,采血人员的采血技巧，经验方面的差异导致了溶血发生率的增加，临床上要对采血人员进行采血技能培训和教育使他们掌握相关的丰富知识，这样才会大大减少溶血的发生率。才能得到高质量的标本，为病人提供高质量的准确可靠的化验结果。罗嗦了这么长时间,耽搁大家的时间,感谢大家对检验工作的支持!最后希望我们合作的更好!,THANK YOU !,