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鸭坦布苏病毒E蛋白基因的原核表达.DOC

1、 鸭坦布苏 病毒 E 蛋白 基因 的原核表达 姬希文 1, 2,李雪松 1,边延峰 3,李国新 1,颜丕熙 1,张七斤 2,李泽君 1 (1.中国农业科学院上海兽医研究所,上海 200241; 2.内蒙古农业大学兽医学院,呼和浩特010018; 3.天津生机集团股份有限公司,天津 300384) 摘 要 : 本研究利用 RT-PCR方法扩增鸭坦布苏病毒 ( Duck Tembusu virus, DTMUV) 奉贤株 ( FX2010)的结构蛋白E基因 , 并 将其 克隆至 原核 表达载体 pET32a( +) ,构建重组表达质粒 pET32a-E。将其 转 化 受体菌 E.coli BL21

2、(DE3)感受态细胞,经 IPTG 诱导 进行 表达。 SDS-PAGE和 Western blot 试验检测结果表明 , E基因在大肠杆菌中得到了表达, 并且可与抗 DTMUV的多克隆抗体发生 特异性反应 。 E基因的 成功 表达 为 DTMUV的 诊断试剂盒、疫苗 等的 研制 奠定基础。 关键词: 鸭坦布苏病毒 ; E基因;克隆; 表达 中图分类号: 文献标志码: A 文章编号: 1674-6422( 2012) 02-0000-00 EXPRESSION OF E PROTEIN OF DUCK TEMBUSU VIRUS IN PROKARYOTIC CELLS JI Xi-wen1,

3、 2, LI Xue-song 1, BIAN Yan-feng3, LI Guo-xin1, YAN Pi-xi1, ZHANG Qi-jin2, LI Ze-jun1 ( 1.Shanghai Veterinary Research Institute, CAAS, Shanghai200241,China; 2.College of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018,China; 3.Tianjin Shengji Group Co., Ltd., Tianjin 3003

4、84, China) Abstract: The E gene of duck Tembusu virus (DTMUV) was amplified by RT-PCR and inserted into the multiple clone sites of the pET32a(+) vector. The recombinant plasmid was transformed into BL21(DE3) competent cells and the cells were induced with IPTG to express the E protein. SDS-PAGE and

5、 Western Blot assays showed that he E protein was successfully expressed and kept the activity for binding the DTMUV-specific antibody. Based on E protein expressed in prokaryotic cells, it might become easy to develop diagnosis kits and vaccines for DTMUV. Key words: Duck tembusu virus; E gene; clo

6、ning; expression 自 2010 年春季以来, 中国 华东地区发生 了以 产蛋下降和死亡 为主要特征的鸭病 的流行 ,之后该病 迅速传播全国多个 省 市,到目前为止,全国大部分主要水禽养殖地区仍然受到该病的威胁,发病率高达 100%, 病死率在 5%10%之间。 经过病毒分离鉴定,目前已经确定引起该病的病原为鸭坦布苏病毒( Duck tembusu virus , DTMUV) 1。 DTMUV属黄病毒科黄病毒属 2, 呈球型 , 直径 30 50 nm, 核心含单股 RNA, 有衣壳 。 从序列上分析,该病毒可能与其他黄病毒属的病毒一样, 具 有 3结构蛋白 , 即 E 蛋白、

7、核蛋白 和 白蛋白为糖蛋白 。 其中, E 蛋白是诱发 动物 机体产生抗 日本乙脑病毒 中和抗体的重要抗原 3 ,黄病毒属 中多数病毒的 E蛋白与 机体宿主的免疫应答作用密切相关,能刺激机体产生中和抗体和血凝抑制抗体 4,5,诱导机体产生持久 T 记忆细胞,引起保护性免疫反应。收稿日期: 2012-02-23 基金项目: 公益性行业 (农业 )专项经费 (201003012);国家国际科技合作项目( 2010DFB33920);中国农业科学院上海兽医研究所中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金项目( 2010JB04) 作者简介: 姬希文,女,硕士研究生 , 预防兽医学专业 通信作者: 李

8、泽君 , E-mail: E 蛋白在病毒 致病过程 中 也 起 关键性 作用 , 该蛋白上一些关键的氨基酸的替代 即 可引起神经毒力和侵袭力 的 丧失 3。 此外, E基因 还 与病毒吸附 、侵 入 宿主细胞有关。 本 研究首次 表达 和 纯化了具有生物学活性 的 DTMUV E蛋白 ,为 DTMUV早期诊断试剂盒 、疫苗 与 E蛋白 结构 功能研究 奠定了基 础。 1 材料和方法 1.1 质粒、菌种及试剂 pET32a( +) 表达载体和 JM109、 BL21(DE3)宿主菌为本试验室保存 ; 限制性内切酶、和 T4 DNA连接 酶 为 NEB公司 ; pMD19-T、 Ex Taq D

9、NA聚合酶、 M-MLV逆 转录 酶购自TaKaRa 公司 ; 鼠源 多克隆抗体由本实验室制备 ; HRP 标记 羊 抗 鼠 IgG 为 KPL公司。 1.2 引物 设计 根据 DTMUV奉贤株( FX2010) E基因 序列 ( GenBank: HQ833330.1), 利用 primer5软件设计一对 E基因的特异性引物,预扩增片段长 大约 1500 bp,由上海英骏生物技术有限公司合成,其序列如下: DTMUV-EcoR I-UP(上游引物) : 5-CACACGAATTCCGAGACTTTGTTGAGGGAGTGAAT- 3 DTMUV-Xho I-DOWN(下游引物) : 5-CA

10、CACCTCGAGGACATGGATATGGGAACTCTACA -3 1.3 DTMUV E基因 片段的 PCR扩增 以提取 的 DTMUV奉贤 株 RNA为模板,反转录合成 cDNA,以 cDNA为模板进行 PCR, 操作方法和 反应条件如下: 以 5 L RNA为模板 , 2 L Random( TaKaRa公司) 为引物 , 70 保温 10 min, 迅速冰浴 2 min,然后分别加入 4 L 5M-MLVbuffer、 1 L RRI、1 L M-MLV( TaKaRa 公司)、 L 10mmol/L dNTP、 L DEPC 水,共 20 L,混匀后 30 保温10 min, 4

11、2 水浴 min, 75 10 min; 将得到的产物进行 PCR 扩增 , 反应条件 : 94 预变性 5 min;94 变性 50 s, 53 退火 1 min; 72 延伸 1 min 30 s, 30 个循环 ; 72 再延伸 15 min, 10 g/L琼脂糖凝胶电泳分析扩增产物 , 回收目的片段 。 1.4 目的基因的克隆与鉴定 将回收的 PCR 产物克隆入 pMD19-T 载体 上,连接反应体系为:pMD19-T 1 L、目的 DNA片段 4 L和 Solution I 5 L; 16 连接 2 h 后,转化 E. coli JM109 感受态细胞,涂布于含 IPTG 和 X-g

12、al的氨苄平板上, 37 恒温培养 1216 h,挑取单个白色菌落接种于含氨苄的液体培养基中, 37 220 r/min 振荡培养,提取质粒 DNA,经 EcoR 和 Xho 双 酶切鉴定 正确后 , 将 阳性 克隆送 上海英俊 公司测序 。 1.5 重组原核表达载体的构建与鉴定 将测序正确 的 pMD19T-E 阳性质粒和原核表达载体 pET32a( +)分别用 EcoR 和 Xho 双酶切 , 分别 回收 酶切后 目的片段 与线性化后的 pET-32a( +) , 加入T4-DNA 连接酶 于 16 连接过夜,并将 连接 产物 转 化 E.coli BL21 感受态细 胞 ; 挑取单菌落进

13、行PCR、酶切鉴定。 2 结果 2.1 PCR 扩增 DTMUV E基因的 PCR 扩增产物 电泳后 可见一 条 约 1500 bp 的 条 带 , 与预期片段大小相符 ( 图 1) ,并且测序结果与目的序列一致。 图 1 鸭坦布苏病毒 E基因的 PCR扩增 Fig.1 PCR-amplified E gene from DTMUV M: DNA分子质量标准 (DL2000); 1: E基因的 PCR产物 ; 2:阴性对照 M: DNA Marker(DL2000); 1: PCR products of E gene; 2: Negative control 3 讨论 鸭坦布苏病毒 (DTM

14、UV)与西尼罗病毒 ( West nile virus, WNV) 、登革病毒 ( Dengue virus, DV)同属黄病科黄病毒属成员, 推测 其 E蛋白有着与 其他 黄病毒 E蛋白有着相似的结构和功能。 Kolaskar等 7-9的研究表明, E蛋白含有 3 个抗原域:域 ,也称为中心域,由 E1 位 E51 位、 E137 位 E196位和 E293 位 E311 位的 130 个氨基酸残基组成,此域有糖基化位点和具有血清学及生物学活性的抗原表位;域 ,由 E52 位 E136 位和 E197 位 E292 位的 181 个氨基酸残基组成,具有中和活性和血凝活性的抗原表位;域 ,由

15、E312 位 E411 位的 100 个氨基酸残基组成,参与受体结合过程,在黄病毒属中十分保守 10。决定毒力的基因片段主要集中在 E蛋白编码区, E蛋白是病毒表面棘突的主要成分,它可激发中和抗体和保护性 免疫,一般认为它是病毒受体的结合蛋白,并介导膜融合和细胞穿入。 本研究利用 PCR 技术扩增出了 DTMUV 完整 E 蛋白基因片段 11,含有形成高级结构所需的所有元件。为了分析原核表达的 E蛋白的生物学特性,建立安全、简便和经济的制备 DTMUV诊断抗原的方法,笔者构建了 DTMUV-E 表达载体,并在大肠杆菌中表达。由于大肠杆菌表达菌株 BL21( DE3 pLysS+) 的转化效率相

16、对较低,所以 按 pET 系列载体克隆操作说明的方法,先把目的基因和载体的连接产物克隆入大肠杆菌 JM109 中,筛选出重组质粒后,再把重组质粒转化表达 菌株 BL21( DE3) ,最后成功地在大肠杆菌中 表达了 E蛋白。 DTMUV 的 E蛋白在病毒与敏感细胞结合过程中起着重要的作用, DTMUV 敏感细胞表面有病毒的相应受体 , 但其结构 和功能 尚未明确 。 我们用原核表达系统表达 E蛋白 , 在多次尝试不同表达载体与宿主菌之后 , 成功的构建了 E蛋白的原核表达载体 。 对原核表达产物的可溶性分析结果表明 ,表达的 E蛋白主要以包涵体的形式存在于菌体裂解后的沉淀中 。 本研究中 E蛋

17、白表达量始终偏低,诱导表达 过程中,相同条件下,转入空质粒载体 细菌的生长速度,明显高于转入 E 基因重组质粒载体细菌的生长速度, 这可能是 E蛋白对细菌细胞有一定毒性有关 ,今后仍需要优化诱导条件和插入片段的长度等,来提高 E蛋白表达量 。 1500 100 250 500 750 1000 2000 bp M 1 2 本实验 用原核表达系统 ,在国内外首次 成功表达 了具有良好 反应活性 的 DTMUV E蛋白 ,这 为DTMUV的诊断 、抗原性分析及功能研究提供了基础。 参考文献 1 Yan P, Zhao Y, Zhang X, et al. An infectious disease

18、 of ducks caused by a newly emerged Tembusu virus strain in mainland ChinaJ. Virology, 2011, 417(1): 1-8. 2 Li Y, Ye J, Cao S, et al. Immunization with pseudotype baculovirus expressing envelope protein of Japanese encephalitis virus elicits protective immunity in miceJ.J Gene Med, 2009,11(2):150-15

19、9. 3 Li P, Zheng Q S, Wang Q, et al.Immune responses of recombinant adenoviruses expressing immunodominant epitopes against Japanese encephalitis virusJ.Vaccine, 2008, 26(46): 5802-5807. 4 吴玉水 . 基因工程重组乙型脑炎病毒 E蛋白作为候选疫苗和诊断抗原的实验研究 D. 第四军医大学博士学位论文 , 2003. 5 Modis Y, Ogata S, Clements D, et al.Variable s

20、urface epitopes in the crystal structure of dengue virus type 3 envelope glycoproteinJ. J Virol, 2005, 79(2): 1223-31. 6Nybakken G E, Nelson C A, Chen B R, et al. Crystal structure of the West Nile virus envelope glycoproteinJ. J Virol, 2006, 80(23): 11467-11474. 7 Stiasny K, Kossl C, Lepault J, et

21、al. Characterization of a Structural Intermediate of Flavivirus Membrane FusionJ. PLoS Pathog, 2007, 3(2): 20 8 Sambrook J, Fritsch E F, Maniatis, T. 分子克隆实验指南 M. 2版 , 金冬雁 , 黎孟枫 , 译 , 北京 : 科学出版社 , 1989, 49-56, 845-848, 876-887. 9Wang J W, Fu S H, Wang H Y, et al. Isolation and identification of Japan

22、ese encephalitis virus in Liaoning provinceJ.中华实验和临床病毒学杂志 , 2006, 20(1): 61-65. 10Verma S K, Gupta N, Pattnaik P, et al. Antibodies against refolded recombinant envelope protein(domain III) of Japanese encephalit is virus inhibit the DTMUV infection to porcine stablek idney cellsJ. Protein Pept Lett

23、, 2009,16(11):1334-1341. 11吕晓丽 , 崔保安 , 陈红英 , 等 . 复合 RT- PCR检测猪乙脑病毒和猪流感病毒方法的建立 J. 华南 农业大学学报 , 2008, 29(4): 79-82. 12 Verma S K, Kumar S, Gupta N, et al. Bacterially expressed recomb inant envelope protein domain III of Japanese encephalit is virus(rDTMUV D III)elicits Th 1 type of immune response in BALB/c miceJ.Vaccine, 2009, 27(49): 6905 -6909. 13Nabeshima T, Loan H T, Inoue S, et al. Evidence of frequent introductions of Japanese encephalitis virus from south east Asia and co ntinental east Asia to Japan J.J Gen Viro, 2009, 90(Pt4): 827 -832.

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