酪氨酸激酶抑制剂A77 1726阻断IL13对成纤维细胞的促胶原合成作用.doc

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1、酪氨酸激酶抑制剂 A77 1726 阻断 IL13 对成纤维细胞的促胶原合成作用作者:熊丽霞, 李文林, 石小玉, 刘卓琦, 唐洪林【摘要】 目的: 观察酪氨酸激酶抑制剂 A77 1726 对白细胞介素13(IL13 )促成纤维细胞胶原合成作用的影响。方法: MTT 法观察不同浓度的 A77 1726 对成纤维细胞的增殖作用的影响。成纤维细胞分为实验组和实验对照组, 实验对照组加入 IL13 (100 g/L), 实验组加入A77 1726(50 mol/L)和 IL13 (100 g/L), 作用 24、 48、 72 h 后, 羟脯氨酸(Hyp)检测 A77 1726 对 IL13 促进成

2、纤维细胞分泌胶原蛋白的影响, RTPCR 观察 A77 1726 对 IL13 促进成纤维细胞 I 型胶原1 基因 mRNA 水平表达的影响, Western blot 观察 A77 1726 对 IL13促进成纤维细胞分泌 I 型胶原蛋白的影响。结果: A77 1726 可抑制成纤维细胞的增殖。羟脯氨酸检测实验组 48 h 组和 72 h 组成纤维细胞分泌胶原蛋白的含量显著低于实验对照组(P0.05), RTPCR 观察到实验组 48 h 组和 72 h 组成纤维细胞 I 型胶原 1 基因(COL1A1)mRNA 表达水平显著低于实验对照组(P0.05), Western blot 观察到实

3、验组48 h 组和 72 h 组成纤维细胞分泌 I 型胶原蛋白的水平显著低于空白对照组(P0.05) 。结论: 酪氨酸酶抑制剂 A77 1726 阻断 IL13 对成纤维细胞的促胶原蛋白合成作用, 阻断 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原 1基因 mRNA 水平和蛋白水平的表达。 【关键词】 酪氨酸酶抑制剂 ; A77 1726; 白细胞介素 13; 成纤维细胞; 胶原A77 1726 是免疫调节药来氟米特(Leflunomide, LEF)的中间代谢产物。LEF 是一种具有多重生理活性的新型的异恶唑类免疫抑制剂, 口服吸收后在肝脏和肠壁内被迅速代谢为 A77 1726, 并通过 A77 17

4、26 在体内发挥免疫调节作用, 该代谢物的一个重要作用是抑制酪氨酸激酶活性1, 2 。已证实 IL13 是许多 II 类细胞因子决定的病理过程的关键诱导物, 与多种纤维化疾病的发病机制有关3, 4, 我们前期实验结果显示细胞因子 IL13 可通过 JAK(细胞内一组酪氨酸蛋白激酶)STAT6 (信息传导和转录激活因子)信号转导通路促进成纤维细胞胶原蛋白的合成5, 6, 本实验进一步通过体外培养成纤维细胞, 观察 A77 1726 对成纤维细胞增殖的影响, 以及 A77 1726 和 IL13 共同作用成纤维细胞, 观察 I 型胶原 1 基因表达及对 I 型胶原蛋白合成的变化, 以探讨 A77

5、1726 是否通过抑制 JAK/STAT6 信号转导通路而阻断纤维化的部分机制。1 材料和方法1.1 材料 成纤维细胞株 3T3 细胞, 常规培养在含 150 mL/L 胎牛血清、 1105 U/L 的青、 链霉素的 DMEM 培养液中, 置于 37、 含50 mL/L 的 CO2 孵箱中培养, 实验前, 实验组和对照组细胞均用无血清DMEM 培养 1216 h, 实验组加入 A77 1726(50 mol/L)和IL13 (100 g/L), 实验对照组加 IL13 (100 g/L) (浓度已做过优化实验, 此浓度最佳) 。IL13 、 Peprotech 公司, A77 1726 为美国

6、欣凯公司上海代表处惠赠, 羊抗 I 型胶原蛋白抗体、 羊抗 actin 抗体、 Santa ruz 公司, HRP 兔抗羊 IgG(II 抗)购自北京中杉金桥生物技术有限公司。Western blot Luminol Reagent(sc2048): Santa Cruz。COL1A1 特异性引物, TaKaRa 公司(大连宝生物), F: 5ACAgAggCATAAAgggTCA3; R: 5CAAggTCACggTCACgAA3 。SV total RNA isolation system(Promega), RTPCR kit(TaKaRa 公司), 羟脯氨酸试验检测盒购自南京建成生物工

7、程研究所。1.2 方法1.2.1 MTT 法检测 A77 1726 对成纤维细胞的增殖影响 将细胞以2.5107/L 密度接种于用 96 孔培养板中, 每孔 100 L, 37、 50 mL/L CO2 孵箱中培养至细胞贴壁, 加入 A77 1726, 使之终浓度分别为 0 mol/L、 25 mol/L、 50 mol/L、 75 mol/L、 100 mol/L, 每一浓度重复 5 孔, 37、 5 mL/L CO2 孵箱中培养 20 h , 每孔加入 MTT 20 L, 继续培养 4 h, 吸弃培养基, 用无血清培养液洗 1 次, 加 150 L 二甲基亚枫溶解沉淀, 振荡 10 min

8、, 结晶物溶解。比色: 选择 570 nm 波长, 在酶联免疫检测仪上, 以空白孔调零, 测定各孔光吸收值。以空白未加药物组作为对照组, 其余各组抑制率=(1-实验组 A)/对照组 A100%。1.2.2 羟脯氨酸释放试验观察 A77 1726 对 IL13 促进成纤维细胞分泌胶原的影响 成纤维细胞以 5108/L 接种于培养瓶, 细胞汇合达80%左右时, 无血清 DMEM 培养 1216 h, 实验对照组加 IL13 (100 g/L)单独作用 24、 48、 72 h, 实验组为 IL13 (100 g/L)和A77 1726( 50 mol/L )共同作用成纤维细胞 24、 48、 72

9、 h, 细胞培养上清液进行羟脯氨酸释放实验, 比较各实验组和实验对照组羟脯氨酸含量的差别, 按试剂盒说明操作。1.2.3 RTPCR 检测 A77 1726 对 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原1 mRNA 表达的影响 取对数生长期细胞, 无血清 DMEM 培养 1216 h, 实验分组同 1.2.2, 用 SV total RNA isolation system 提取总 RNA, 逆转录合成第 1 条 cDNA, 使用 COL1A1 特异性引物, 按照 TKR RTPCR kit 标准程序进行扩增, 产物为 378 bp, 进行 10 g/L 琼脂糖电泳。1.2.4 Western bl

10、ot 检测 A77 1726 对 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原蛋白表达的影响 取生长良好的成纤维细胞, 细胞密度51081109/L 接种于培养瓶中, 无血清培养 1216 h 后, 实验分组同 1.2.2, 收集细胞 , 随后各组用 RIPA Buffer 将细胞充分裂解, BioRad Dye Reagent(BioRad )进行蛋白定量。调整样品中蛋白质含量, 均以 20 g 蛋白量上样进行 70 g/L SDS 聚丙烯酰胺凝胶电泳, 硝酸纤维膜转印。50 g/L 脱脂奶粉 4封闭, TBS 洗涤, 经 I 型胶原蛋白第一抗体和第二抗体分别孵育后, ECL 试剂显像。再利用清除缓冲

11、液清除硝纤膜上已结合的一抗和二抗, 重新经 actin 一抗、 二抗孵育后, 再次显像, 作为内部参照。对结果利用凝胶定量软件 Quantity One(BioRad) 进行光密度分析。1.2.5 统计学分析 各实验重复 3 次 , 计量资料以 xs 表示, 以 t 检验对实验组和对照组进行差异显著性检验。P0.05 为差异有统计学意义。2 结果2.1 A77 1726 抑制成纤维细胞生长 不同浓度 A77 1726 作用成纤维细胞, MTT 法检测到 A77 1726 可抑制成纤维细胞增殖, 当 A77 1726浓度在 25 mol/L 至 100 mol/L 时, 细胞抑制率明显上升。为此

12、, 取50 mol/L 作为 A77 1726 对成纤维细胞作用的浓度(表 1)。表 1 不同浓度 A77 1726 对成纤维细胞生长的影响(略)Tab 1 The effect of A77 1726 on inhibition rate in fibroblastsaP0.05, bP0.01 vs control.2 2 A77 1726 阻断 IL13 促成纤维细胞分泌胶原 羟脯氨酸是胶原分解代谢的产物, 机体内的羟脯氨酸主要存在胶原中, 因此, 羟脯氨酸是反映胶原含量的重要指标。IL13 和 A77 1726 同时作用成纤维细胞 24 h 后分泌的总胶原含量与单独 IL13 作用 2

13、4 h 组比较可见减弱, 48 h 组可见明显减弱(P0.05), 72 h 组减弱最显著(P0.01, 图 1) 。图 1 成纤维细胞经 A77 1726 和 IL13 共同作用后羟脯氨酸的变化(略)Fig 1 The effect of A77 1726 and IL13 on Hyp production in fibroblastsaP0.05, bP0.01 vs control.2.3 A77 1726 抑制 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原 1 mRNA 表达 RNA 提取后, 用 RTPCR kit(TaKaRa)进行 RTPCR 反应, actin (511 bp)与 CO

14、L1A1 在同一管内扩增, 作为 RTPCR 的内部参照。反应结束, 10 g/L 琼脂糖凝胶电泳, 结果如图 2A 所示, IL13 对照组以及 A77 1726 和 IL13 共同作用实验各组都出现了明显的 COL1A1mRNA 表达, 即约 378 bp 处的荧光条带, 通过图像扫描, 积分光密度比值分析, 各实验组 COL1A1mRNA 表达与对照组比较, 24 h 组可见减弱, 48 h 组有显著减弱(P0.05), 72 h 组减弱最明显(P0.01, 图 2B) 。IL13 作用24、 48、 72 h 后, 成纤维细胞 COL1A1mRNA 的表达逐渐增强, 而 A77 172

15、6 和 IL13 共同作用 24、 48、 72 h 后, 成纤维细胞 COL1A1mRNA 的表达比 IL13 单独作用组有减弱, 表明 A77 1726 可抑制 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原 1 mRNA 的表达。图 2 A77 1726 对 IL13 促成纤维细胞 COL1A1mRNA 表达的影响(略)Fig 2 Effects of IL13 and A77 1726 on the expression of COL1A1 mRNAA: Indicates the result of agar gel electrophoresis of RTPCR; 1: DNA marker

16、; 2, 4, 6: IL13 24, 48, 72 h group; 3, 5, 7: IL13+A77 1726 24, 48, 72 h group. B: Indicates the ratio of luminous density of COL1A1 and actin bands. aP0.05, bP0.01 vs control.2.4 A77 1726 抑制 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原蛋白表达 IL13(100 g/L) 和 A77 1726(50 mol/L)作用成纤维细胞不同时间, 裂解细胞提取蛋白质, 进行 Western blot 实验。结果见图 3A 为W

17、estern blot 的结果, 图 3B 为各组 I 型胶原蛋白与 actin 条带的光密度比值。结果显示, 各组在蛋白上样量相等, 内参条带基本一致的情况下, 实验各组均出现了 I 型胶原蛋白条带, 光密度比值分析表明IL13 (100 g/L)和 A77 1726(50 mol/L)作用 24 h 后, I 型胶原蛋白表达可见减弱, 48 h 组表达减弱显著增强(P0.05), 72 h组表达减弱最明显(P0.01)。IL13 作用 24 h、 48 h、 72 h 后, 成纤维细胞 I 型胶原蛋白的表达逐渐增强, 加入了 A77 1726, 成纤维细胞I 型胶原蛋白的表达显著减弱, 说

18、明 A77 1726 阻断 IL13 促成纤维细胞I 型胶原蛋白的表达。图 3 A77 1726 对 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原蛋白表达的影响(略)Fig 3 Effects of IL13 and A77 1726 on the expression of collagen type I proteinA: Indicates the result of Western blot; 1, 3, 5: IL13 24, 48, 72 h group; 2, 4, 6: IL13+A77 1726 24, 48, 72 h group. B: Indicates the ratio of

19、 luminous density of collagen type I and actin bands. aP0.05, bP0.01 vs control.3 讨论我们前期实验结果显示 IL13 能够促进成纤维细胞的增殖, 作用 24 h 后即有 I 型胶原 1mRNA 的表达上调, 且持续至 72 h, 与文献报道一致7 。并证实了 IL13 的该作用是通过将 JAK/STAT6 信号转导中的转录因子 STAT6 磷酸化来实现的。本实验将酪氨酸酶抑制剂 A77 1726 和IL13 一起共同作用成纤维细胞, 结果显示: A77 1726 和 IL13 作用48 h 后 I 型前胶原 mR

20、NA(COL1A1)在成纤维细胞中表达比 IL13 单独作用组明显减弱, 作用 72 h 后几乎达到完全阻断, 这与实验中 I 型胶原蛋白合成量的变化相符。I 型前胶原 mRNA 是成纤维细胞合成 I 型前胶原蛋白所必须的翻译模板, 其含量减少, I 型前胶原的翻译速度必然下降, 同样条件下 I 型前胶原合成量减少, 则成纤维细胞分泌 I 型胶原蛋白下降。因此我们认为 A77 1726 能通过抑制成纤维细胞内 I 型前胶原 mRNA 的转录, 而抑制成纤维细胞合成分泌 I 型胶原蛋白。推测这种阻断作用的可能原因是: (1)A77 1726 抑制成纤维细胞的生长增殖造成分泌细胞总数量减少, 与

21、MTT 实验结果相符。我们的实验结果显示 A77 1726 25 mol/L 浓度不抑制成纤维细胞生长, 而 50 mol/L 浓度可显著抑制成纤维细胞生长, 故选择 50 mol/L 作为 A77 1726 的使用浓度。 (2)A77 1726 通过抑制 IL13 信号转导通路中的 STAT6 的磷酸化, 使之不能形成二聚体进入核内与胶原基因启动子结合, 而抑制胶原基因的转录和翻译。相类似的文献报道有: Si 等8的研究表明, 用 A77 1726 预处理肝星状细胞(HSC)可通过阻断 3 种信号转导通路 JAK/STAT 通路、 MAPK 通路、 PI3K/AKB 通路而显著抑制 HSC

22、的增殖从而抑制 HSC 中的 I 型胶原蛋白的沉积, 阻断肝纤维化进程。另外 Yao 等9, 10的研究显示 A77 1726 可抑制 HSC 的增殖和胶原合成, 而抑制由 CCl4 诱导的大鼠肝纤维化, 其机制可能与其抑制致 HSC 激活的因子如 TGF 、 TNF 和 IL1 分泌有关。Akiho 等11研究表明 A77 1726 可抑制 IL4 和 IL13 诱导下的 STAT6 的 DNA结合活性, 且效果与抗 STAT6 抗体相同。近期研究表明, IL4 和IL13 可以显著增强角质细胞 HaCaT 表面 CCL26 的产生, 但 A77 1726 通过抑制 JAK1STAT6 依赖

23、的通路, 对其增强作用产生阻碍12 。综上所述, 本研究表明, A77 1726 阻断 IL13 促成纤维细胞 I 型胶原 1 基因 mRNA 水平和蛋白水平的表达, 因此其对纤维化的抑制作用值得进一步研究。【参考文献】1 丁新国, 李晓东, 张红梅, 等. 来氟米特对紫癜性肾炎患者血清 IL6 、 IL8 及 TNF 水平的影响J. 细胞与分子免疫学杂志, 2007, 23(12): 1176-1177.2 Siemasko K, Chong AS, Jack HM, et al. Inhibition of JAK3 and STAT6 tyrosine phosphorylation b

24、y the immuno suppressive drug leflunomide leads to block in IgG1 productionJ. J Immunol, 1998, 160(4): 1581-1588.3 Wynn TA. Fibrotic disease and the TH1/TH2 paradigmJ. Nat Rev Immunol, 2004, 4(8): 583-594.4 Aliprantis AO, Wang J, Fathman JW, et al. Transcription factor Tbet regulates skin sclerosis

25、through its function in innate immunity and via IL13 J. Proc Natl Acad Sci USA, 2007, 104(8): 2827-2830.5 熊丽霞, 石小玉, 李文林, 等. 成纤维细胞胶原合成及细胞内 STAT6 蛋白磷酸化与白细胞介素 13 的促进作用J. 中国组织工程研究与临床康复, 2007, 11(2): 275-277.6 熊丽霞, 石小玉, 李文林, 等. 白细胞介素 13 刺激成纤维细胞胶原基因转录和胶原蛋白合成J. 中国组织工程研究与临床康复, 2007, 11(23): 4466-4469.7 Orie

26、nte A, Fedarko NS, Pacocha SE, et al. Interleukin13 modulates collagen homeostasis in human skin and keloid fibroblastsJ. J Pharmacol Exp Ther, 2000, 292(3): 988-994.8 Si HF, Li J, Lu XW, et al. Suppressive effects of leflunomide on leptininduced collagen I involved in hepatic stellate cell proliferationJ. Exp Biol Med (Maywood), 2007, 232(3): 427-436.9 Yao HW, Li J, Chen JQ, et al. Inhibitory effect of leflunomide on hepatic fibrosis induced by CCl4 in ratsJ. Acta Pharmacol Sin, 2004, 25(7): 915-920.10 姚宏伟, 李 俊, 陈季强, 等. 来氟米特对肝星状细胞增殖和胶原合成的影响J. 浙江大学学报(医学版), 2004, 33(6): 515-518.

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