考马斯亮蓝法测蛋白浓度.doc

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资源描述

1、考马斯亮蓝法(Bradford)测蛋白浓度考马斯亮兰法:一种蛋白定量法具体操作步骤:(一)实验原理双缩脲法(Biuret 法)和 Folin酚试剂法(Lowry 法)的明显缺点和许多限制,促使科学家们去寻找更好的蛋白质溶液测定的方法。1976年由 Bradford 建立的考马斯亮兰法(Bradford 法) ,是根据蛋白质与染料相结合的原理设计的。这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点,因而正在得到广泛的应用。这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。考马斯亮兰 G-250染料,在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料的最大吸收峰的位置(lmax) ,由465nm 变为595nm,溶液的颜色也由

2、棕黑色变为兰色。经研究认为,染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸残基相结合。在595nm 下测定的吸光度值 A595,与蛋白质浓度成正比。Bradford 法的突出优点是:(1)灵敏度高,据估计比 Lowry 法约高四倍,其最低蛋白质检测量可达1mg。这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大,蛋白质染料复合物有更高的消光系数,因而光吸收值随蛋白质浓度的变化比 Lowry 法要大的多。(2)测定快速、简便,只需加一种试剂。完成一个样品的测定,只需要5分钟左右。由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20分钟之间,

3、颜色的稳定性最好。因而完全不用像 Lowry 法那样费时和严格地控制时间。(3)干扰物质少。如干扰 Lowry 法的 K 、Na 、Mg2 离子、Tris 缓冲液、糖和蔗糖、甘油、巯基乙醇、EDTA 等均不干扰此测定法。此法的缺点是:(1)由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford 法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差,在制作 标准曲线时通常选用 g 球蛋白为标准蛋白质,以减少这方面的偏差。(2)仍有一些物质干扰此法的测定,主要的干扰物质有:去污剂、 Triton X-100、十二烷基硫酸钠(SDS)和0.1N 的 NaOH。 (如同0.1N的酸干扰 Lowary 法

4、一样) 。(3)标准曲线也有轻微的非线性,因而不能用 Beer 定律进行计算,而只能用标准曲线来测定未知蛋白质的浓度。(二)试剂与器材1. 试剂:(1)标准蛋白质溶液,用 g球蛋白或牛血清清蛋白(BSA),配制成1.0mg/ml 和0.1mg/ml 的标准蛋白质溶液。(2)考马斯亮兰 G250染料试剂:称100mg 考马斯亮兰 G250,溶于50ml 95%的乙醇后,再加入100ml 85%的磷酸,用水稀释至1升。2. 器材:(1)可见光分光光度计 (2)旋涡混合器 (3)试管16支(三)操作方法1. 标准方法(1)取16支试管,1支作空白,3支留作未知样品,其余试管分为两组按表中顺序,分别加

5、入样品、水和试剂,即用1.0mg/ml 的标准蛋白质溶液给各试管分别加入:0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml,然后用无离子水补充到0.1ml。最后各试管中分别加入5.0ml 考马斯亮兰 G250试剂,每加完一管,立即在旋涡混合器上混合(注意不要太剧烈,以免产生大量气泡而难于消除) 。未知样品的加样量见下表中的第8、9、10管。考马斯亮兰法实验表管号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10标准蛋白质(1.0mg/ml)0 0.01 0.02 0.04 0.06 0.08 0.10蒸馏水 0.1 0.09 0.08 0.06 0.04 0.02 0.0考马斯亮蓝G2

6、50试剂5 5 5 5 5 5 5每管中的蛋白质量(mg)0光吸收值(A595)未知蛋白(约1.0mg/ml)0.04 0.06 0.1(2)加完试剂25分钟后,即可开始用比色皿,在分光光度计上测定各样品在595nm 处的光吸收值 A595,空白对照为第1号试管,即0.1mlH2O 加5.0mlG 250试剂。注意:不可使用石英比色皿(因不易洗去染色) ,可用塑料或玻璃比色皿,使用后立即用少量95%的乙醇荡洗,以洗去染色。塑料比色皿决不可用乙醇或丙酮长时间浸泡。(3)用标准蛋白质量(mg)为横座标,用吸光度值 A595为纵座标,作图,即得到一条标准曲线。由此标准曲线,根据测出的未知样品的 A5

7、95值,即可查出未知样品的蛋白质含量。0.5mg 牛血清蛋白/ml 溶液的 A595约为0.50。2. 微量法当样品中蛋白质浓度较稀时(10100mg/ml),可将取样量(包括补加的水)加大到0.5ml 或1.0ml, 空白对照则分别为0.5ml 或1.0ml H2O, 考马斯亮蓝 G250试剂仍加5.0ml, 同时作相应的标准曲线,测定595nm 的光吸收值。0.05mg 牛血清蛋白/ml 溶液的 A595约为0.29。 Bradford 法是最常用的蛋白质快速定量方法。Coomassie brilliant blue G-250与蛋白质结合使染料的最大吸收峰由465 nm 变为595 nm,溶液的颜色由棕色变为兰色,595nm 波长下吸光度值与蛋白含量成正比。灵敏度比 Lowry 法高4倍,与 BCA 法相当。

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