高密度脂蛋白胆固醇的检测方法及标准化研究进展.doc

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4、关。美国Framingham的研究显示,HDL-C每减少0.026 mmol/L(1 mg/dl),冠心病(CHD)发生的风险将增加2%3%。目前临床上已广泛采用HDL-C下降作为CHD危险因素指标。低HDL-C?.91 mmol/L (35 mg/dl)是CHD的主要危险因素,而高HDL-C1.55 mmol/L(60 mg/dl)被认为是负危险因子,具有保护性1,2。作者参考美国国家胆固醇教育计划(NCEP)有关文件及新近文献资料,对HDL-C检测方法及标准化问题作一简述。 一、HDL的生物化学与乳糜微粒(CM)、极低密度脂蛋白(VLDL)和低密度脂蛋白(LDL)相比,高密度脂蛋白(HDL

5、)是密度最大的脂蛋白(d=1.0631.210 kg/L)。其组分中蛋白质(Pro)、磷脂(PL)、胆固醇(chol)和甘油三酯(TG)各约占50%、25%、20%和5%。HDL中Pro主要是载脂蛋白(apo)AI和AII;chol占总胆固醇(TC)的25%35%,酯化胆固醇(CE)和游离胆固醇(FC)之比约为31。HDL可通过酶和受体的作用,将周围组织的chol移至肝脏降解处理,同时抑制细胞结合和摄取LDL-C,阻止chol在动脉壁的沉积,故HDL被认为是AS的预防因子3。二、HDL-C检测方法由于所有脂蛋白都含有chol,因此必须从其他脂蛋白中分离出HDL后再行测定。分离HDL的方法有超速

6、离心法、凝胶过滤法、免疫化学法、电泳法及化学沉淀法。临床化学实验室应用最广泛的是化学沉淀法。近来国外连续报道了几种HDL-C的直接测定方法,因其简便、快速,能进行自动化分析,已引起广泛关注。1.参考方法:美国疾病控制与预防中心(CDC)测定HDL-C的参考方法为超速离心法,也为NCEP所推荐4。该法分三步进行:(1)超速离心(40000r/min,18.5小时)除去密度(d)1.006 kg/L富含TG的脂蛋白(CM、VLDL)。(2)下层悬浮液用肝素-MnCl2法(Hep-Mn2+法)离心沉淀(1 500g,30分钟),以除去富含apoB的脂蛋白LDL、Lp(a)。(3)测定上清液中chol

7、含量,方法用CDC参考方法(ALBK法)。此法主要用于靶值的确定及各种HDL-C检测方法学评价,也是国际间人群调查研究准确性基础。由于需超速离心机,操作复杂且严格,所需标本量大(5 ml血浆),离心时间长,一般实验室难以开展,不适于大规模标本比较研究。CDC胆固醇参考方法实验室网络(Cholesterol reference Method LaboratoryNetwork, CRMLN)近来选用了一种“指定性比较方法”作为转移CDC参考方法准确性的适用方法。此法首先用硫酸葡聚糖(DS50,分子量5万)作沉淀剂(DS50-Mg2+),离心沉淀,除去含apoB的脂蛋白CM、VLDL、IDL、LD

8、L和Lp(a);然后上清液HDL中胆固醇采用ALBK法测定。这种方法已在网络的每个实验室被仔细评价及成功地进行标准化,相对CDC参考方法而言,已大为简化5。发展与CDC参考方法结果具有可比性的改良简单化参考方法将会促进HDL-C标准化在常规实验室中的开展。2.化学沉淀法:常用的沉淀剂为多阴离子,如磷钨酸(PTA)、DS、肝素(Hep)或非离子多聚体如聚乙二醇(PEG)与某些两价阳离子(如Mg2+、Ca2+、Mn2+)合用能使除HDL外含apoB的脂蛋白都沉淀。沉淀形成的机制还不十分清楚。HDL中chol多用酶法(CHOD-PAP)测定。此类方法操作简单,不需昂贵设备且费用较低,适用于普通实验室

9、。被NCEP推荐为常规方法5。早期的沉淀法如用Hep-Mn2+法,易受高TG干扰,使沉淀后的上清呈浑浊状,且Mn2+干扰酶法测定chol,故目前已基本不用。只是CDC-NHLBI(国立心肺血液学研究所)现存的有关HDL-C与CHD风险的流行病与临床数据库源于此法,故NCEP建议予以保留。PEG6000-Mg2+法沉淀效率高,与CDC参考方法有较好一致性,但精密度较差,美国现已很少采用。Warnick等6推荐用DS50-Mg2+法,认为其对分离HDL有较好特异性,但因国内试剂馈缺而限制了其应用。以往报道用DS500-Mg2+法(DS500,分子量为50万)测定HDL-C结果偏低,但将血清与沉淀剂

10、之比改为11后,高脂对VLDL沉淀的干扰大大降低,提高了检测的精密度与准确度7。PTA-Mg2+法不干扰酶法测定chol,且试剂易得,对高TG血清也能完全沉淀,是目前临床实验室应用最多的方法,美国有50%以上的商品试剂用此法。Demacker等8对常用6种沉淀法进行了比较,结果表明PTA-Mg2+法总误差为10.6%,符合NCEP要求。PTA-Mg2+法结果可靠,费用合理,适合常规应用。中华医学会检验学会也在国内推荐此法,并制定了详细检测草案9。化学沉淀法多受高TG影响,含apoB颗粒因不能完全沉淀而导致HDL-C假性增高。为克服此缺点,美国Reference Diagnostics公司推出新

11、一代磁化DS沉淀法检测试剂盒。其原理是单一沉淀剂与血清标本15混合在一标本杯中,然后将标本杯放进磁盘,非HDL脂蛋白颗粒因被磁化,能很快被磁盘吸至杯底(沉淀),而与HDL颗粒分离(上清)。此过程简单迅速,不需离心,无HDL共沉淀及含apoB颗粒沉淀不完全现象。结果准确,不受高TG干扰,比传统DS50-Mg2+法测定时间大大缩短,亦有一定应用价值10。3.电泳法:在一定电场条件下,由于各种脂蛋白的分子大小及其在缓冲溶液中所带电荷数的不同,故在支持介质上迁移率亦不同。较小的HDL分子向阳极有较高的迁移率,可将HDL与VLDL、LDL区分开。Helena公司已开发可供REP快速全自动电泳仪使用的HD

12、L-C检测试剂盒,其原理是:血清(1 l)经琼脂糖凝胶电泳(400V,15分钟)后,将chol基质试剂均匀铺在凝胶表面,孵育一段时间(10分钟)后用10%冰醋酸固定,然后将凝胶烤干。570 nm波长下自动扫描即可确定HDL-C百分含量。同时将血清TC值输入,则可求得血清HDL-C值。此法与PTA-Mg2+法有较好相关性,可用于高TG标本检测,也常用于评价各种化学沉淀法沉淀是否完全等,目前多用于临床研究。4.直接测定法:由于化学沉淀法测定HDL-C需将标本进行选择性沉淀预处理后,上清液方可用酶法或化学法测定chol。其最大缺点是不能进行自动化分析,尤其不适应大规模流行病学调查或临床大批量标本诸多

13、项目同时检测。国外近几年相继研制开发出几种不需沉淀的直接测定法,可用于仪器自动化测定,为临床及时、快速、准确测定HDL-C及标准化工作提供了条件。(1)PEG/抗体包裹法:Kakuyama等11于1994年报道用PEG和抗apoB、抗apoC抗体包裹非HDL的脂蛋白,然后用酶法直接测定HDL-C的自动化分析方法。日本International Reagents公司已研制成功可供商品化自动检测的试剂盒。测定过程包括4种试剂:低浓度的PEG4000,包裹CM、VLDL、LDL。特异性抗apoB、apoC抗体,使CM、VLDL和LDL复合物凝聚。酶试剂,用于检测上述复合物以外脂蛋白胆固醇(即HDL-

14、C)。盐酸胍试剂,终止酶促反应和溶解含apoB脂蛋白复合物,以免其干扰吸光度测定。Nauck等12对PEG/抗体包裹法进行了系统评价,认为该法与PTA-Mg2+法具有好的相关性(r=0.970),总CV为2.4%8.4%,线性范围可达1 500 mg/L,最小可信限30 mg/L。该法抗TG干扰能力强,TG为20 g/L仅使结果增高2%。溶血使结果显著增高而黄疸使结果偏低。此法不需沉淀分离,易于操作和检测全自动,但由于试剂中需特异性抗体而使成本较高(约为PTA-Mg2+法的20倍),且需要可加4种试剂的生化分析仪分步加入4种试剂,因而限制了其临床应用,目前仅用于如Hitachi 911型等自动

15、生化分析仪。(2)选择性抑制法:应用两种不同的表面活性剂及多阴离子,根据脂蛋白的酶反应选择性,直接测定HDL-C。第一反应中,加入多阴离子和分散型表面活性剂(亦称反应抑制剂),LDL、VLDL和CM先在多阴离子下聚集,由于反应抑制剂与LDL、VLDL和CM的疏水性基因具有高度亲和力,故其吸附在聚集的脂蛋白颗粒表面形成遮蔽圈。同时在HDL表面也吸附有少量反应抑制剂,但由于亲和力较弱,其结合是可逆的。第二反应中,与胆固醇酶试剂一起加入具有对HDL颗粒中亲水性基团具有亲和力的可溶性表面活性剂(亦称反应促进剂),由于反应促进剂对HDL可溶性的强特异性作用可置换其表面吸附的少量反应抑制剂,从而与酶试剂反

16、应,达到无需沉淀分离直接测定HDL-C的目的。1995年日本第一化学药品株式会社(Daiichi)推出第一代可供自动化检测的商品化试剂盒,该试剂盒中的酶试剂是冻干品,复溶后一周即见变色,影响测定效果。1996年下半年推出第二代液体双试剂,试剂稳定,适合于各类自动生化分析仪。美国Genzyme Diagnostics公司的商品化试剂盒N-genousTMHDL-C亦属此类方法。此法所需标本量少(3 l血清),精密度高(批内、批间CV均?%),与PTA-Mg2+法相关性好(r=0.987),线性范围可达1 500 mg/L,回收率90%110%。血红蛋白、Vit c对测定无影响,胆红素对测定影响尚

17、存在争议13,14。Huang等14研究发现选择性抑制法检测HDL-C特异性稍差,可能由于第一步反应中非HDL的不完全包裹遮蔽,而使酶试剂与其中CM、VLDL和LDL中胆固醇发生反应,使结果假性增高。因此,在临床广泛推广应用此法前,必须对校准系统重新标准化以提高其特异性。(3)PEG修饰法:Sugiuchi等15于1995年报道应用PEG修饰酶对不同脂蛋白中胆固醇反应的选择性,在-环糊精硫酸盐和Mg2+及少量DS作用下,不需预先分离沉淀直接测定血清HDL-C的方法。由于PEG6000能引起胆固醇酯酶(CEH)和胆固醇氧化酶(CHOD)的变构,变构酶PEG-CEH和PEG-CHOD对脂蛋白的催化

18、作用有选择性,其顺序依次为LDLCM。而-环糊精硫酸盐能限制CM、VLDL颗粒进入环状的环糊状结构,从而避免酶的催化作用,这种作用还与Mg2+浓度有关。因此,在Mg2+及少量DS存在前提下,可直接检测HDL-C。日本协和(Kyowa)、德国Centronic gmbH Boehringer Mannheim及英国RANDOX公司等已分别研制出可供自动化检测的商品试剂盒。此法所需血清量少(4 l),线性范围宽(达1 500 mg/L),精密度高(批内、批间CV均?%),回收率为99%103%,黄疸、溶血对检测结果影响较小,不受Vit c、肝素等干扰,与PTA-Mg2+法具有良好相关性(r=0.9

19、75)。虽然PEG修饰法在高TG(30000 mg/L)时PEG变构酶能与VLDL反应,而使结果轻度偏高,但总误差仍在NCEP可接受范围之内10。有作者认为,PEG修饰法在特异性与准确度方面优于选择性抑制法14,而更适用于常规实验室。三、HDL-C检测的标准化HDL-C是血脂分析的常规项目,已越来越引起临床的重视。研究表明,HDL-C测定误差可引起LDL-C计算误差,其结果小的误差可引起CHD风险估计的严重错误。因此,必须开展检测的标准化工作以保证测定结果的准确可靠性。HDL-C检测的标准化主要在于方法的合理选择、标准品和质控材料的制备及标准化方案的制定与实施等。1.标准化目标:CDC-NHL

20、BI的标准化程序对HDL-C检测的可接受限的目标进行了规定。要求检测准确度在CDC参考值(RV)的10%以内,在小于1.03 mmol/L(40 mg/dl)、1.031.55 mmol/L(4060 mg/dl)、大于1.55 mmol/dl(60 mg/dl)浓度范围内,HDL-C检测的最大不精密度s分别为0.065 mmol/L(2.5 mg/dl)、0.078 mmol/L(3.0 mg/dl)、0.090 mmol/L(3.5 mg/dl)。NCEP目前暂定目标为总误差22%;精密度要求HDL-C1.09 mmol/L(42 mg/dl)时,CV6%;HDL-C?.09 mmol/L

21、(42 mg/dl)时,s0.065mmol/L(2.5 mg/dl)。准确度要求偏差(bias)10%(与CDC参考方法比较)。1998年后目标为总误差13%;精密度要求HDL-C1.09 mmol/L(42 mg/dl)时,CV4%;HDL-C?.09 mmol/L时,s0.044mmol/L(1.7 mg/dl)。准确度要求偏差5%5。2.标准物和质控材料:HDL-C标准化工作首先需要建立一套完整方案,评价和制备合适的参考材料和标准物。当前国际上已有良好的TC分析系统及可靠的标准参考物质,为HDL-C标准化工作创造了条件。我国已经研制出与美国标准和技术研究所(NIST)的胆固醇纯品SRM

22、911b相当的胆固醇标准物及用参考方法定值的低胆固醇定值血清16。CAP通过研究证实,基质效应(matrix effects)影响沉淀法测定HDL-C。其调查一些检测仪器和方法的线性发现,基质效应明显影响检测线性,而且影响源于沉淀步骤。因此,要求标准物和质控材料应不受基质效应影响或影响最小,适于HDL-C测定方法校准、标准化和质量控制,能用于检测准确度与精密度,稳定时间长,而且能用于国际和国内室间调查与评价。由于HDL颗粒不稳定,脂蛋白各组分中apoB经常变化,使得制备合适HDL-C标准物较为困难。目前各厂家提供的校准物和质控材料多为冻干品,亦有液体状,而且定值差别甚远。CDC一直采用冰冻混合

23、血清作为参考物质用于HDL-C标准化,值得借鉴。近来陆续开发的自动化检测方法虽为标准化提供了方便,但对校准品和质控材料提出了更高要求。一方面需要满足上述基本要求,另一方面临床期望其还能同时用于其他项目的仪器校准和质量控制。这也是HDL-C研究的课题之一。3.方法学问题:由于目前尚无HDL-C测定的决定性方法及一级参考材料,使HDL-C标准化工作难度更大。NCEP近来对HDL-C检测进行了系统回顾,并推荐了HDL-C的整个测定方案。推荐CDC采用的超速离心法为参考方法,沉淀法为常规方法。对标准化目标,如何减少分析前误差(包括受试者的准备、标本采集、处理和贮存等),检测过程中应注意问题(包括如何减

24、小基质效应影响、提高沉淀特异性和进行质控)及室间质评等也提出了一些具体要求与建议。根据我国1996年临床化学室间质评小结,国内目前仍多用沉淀法测定HDL-C,其中PTA-Mg2+法占首位(61.8%),其次为PEG6000法(24.3%)。所以当前任务是对分离条件规范化,临床标本应用新鲜血清进行检测以避免基质效应。同时制备标准物和包括沉淀步骤在内的定值血清,以对整个检测过程进行标准化。对几种自动化检测方法进行系统评价,也有待于进一步深入研究与探讨。参考文献 1 Wilson PW, Abbott RD, castelli WP. High density lipoprotein cholest

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26、, Fuster V, Badimon L. The role of high density lipoprotins in the regressionof atherosclerosis. Circulation, 1992, 86:-86-94.4 Wiebe DA, Warnick GR. Measurement of high-density lipoprotein cholesterol. In: Rifai N,warnick GR, eds. Laboratory measurement of lipids, lipoproteins and apolipoproteins.w

27、ashington, DC: AACC Press, 1994:91-105.5 Warnick GR, Wood PD. National Cholesterol Education Program recommendations formeasurement of high-density lipoprotein cholesterol: executive summary. Clin Chem, 1995, 41:1427-1433.6 Warnick GR, Benderson J, Albers JJ. Dextran sulfate-Mg2+ precipitation proce

28、dure forquantitation of high-density lipoprotein cholesterol. Clin Chem,1982, 28:1379-1388.7 高德路,谢声扬,李紫阳,等.硫酸葡聚糖500-镁法测定血清高密度脂蛋白胆固醇.中华医学检验杂志,1996,19:22-24.8 Demacker PNM, Hessels M, Toenhake-Dijkstra H, et al. precipitation methods for high-densitylipoprotein cholesterol measurement compared, and fi

29、nal evaluation under routine operating conditions of a methodwith a low sample-to-reagent ratio. Clin Chem, 1997, 43:663-668.9中华医学会检验学会血脂测定推荐方法.四、血清高密度脂蛋白胆固醇测定法(草案).中华医学检验杂志,1995,18:311-312.10 Harris N, Galpchian V, Rifai N. Three routine methods for measuring high-density lipoproteincholesterol com

30、pared with the reference method. Clin Chem, 1996,42:738-743.11 Kakuyama T, Kimura S, Hashiguchi Y. Fully automated determination of HDL-cholesterolfrom human serum with Hitachi 911 Abstract. Clin Chem, 1994, 40:1104-1109.12 Nauck M, Marz W, Haas B, et al. Homogeneous assay for direct determination o

31、f high-densitylipoprotein cholesterol evaluated. Clin Chem, 1996, 42:424-429.13 Harris N, Galpchian V, Thomas J, et al. Three generations of high-density lipoprotein cholesterolassays compared with ultracentrifugation/dextran sulfate-Mg2+ method. Clin Chem, 1997, 43:816-823.14 Huang YC, Kao JT, Tsai

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