羧基化碳纳米管负载羟基喜树碱的制备、表征及肠吸收特性研究.DOC

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资源描述

1、1羧基化碳纳米管负载羟基喜树碱的制备、表征及肠吸收特性研究邓亚利 1,林芳花 2,何秀华 1,周莉玲 3*(1 华南农业大学制药工程系,广东 广州 510642;2 惠州学院生命科学系,广东 惠州 516007;3 广州中医药大学,广东 广州 510405 )摘要 目的: 研究羧基化多壁碳纳米管负载羟基喜树碱(HCPT)的制备工艺,以及负载物(HCPT-MWCNTs-COOH )的肠吸收特性。方法: 比较球磨法、超声法与振荡法的吸附量差异,选择最优负载法;负载物采用 FIR、紫外光谱进行表征后,采用 HPLC 法测定其含量;采用离体外翻肠囊模型研究负载物在不同肠段的吸收特性,采用 HPLC 法

2、测定样品浓度,计算吸收速率常数(Ka)。结果: 冷冻球磨法负载量最高,为 12.5 g mg-1;紫外、红外图谱变化表明碳纳米管负载了 HCPT。肠吸收试验结果表明 HCPT 浓度上升,肠吸收速率常数呈线性增加;高浓度在十二指肠、空肠、回肠、结肠的 Ka 分别为:150.9、92.7、148.9、183.0 ngcm -2h-1。在各个肠段的 Ka 均无显著性差异。结论:负载物中 HCPT 溶解性增加并保护了内酯环,提高了肠透过速率;在小肠中为被动扩散吸收。关键词 羧基化碳纳米管;羟基喜树碱;离体外翻肠囊模型;肠吸收 1中图分类号 R944.9 文献标识码 A 文章编号Carboxylated

3、 carbon nanotubes10-hydroxy camptothecin preparation, characterization and intestinal absorption in vitroDENG Ya-li1, LIN Fang-hua2, HE Xiu-hua1, ZHOU Li-ling3*(1 Dept. of Pharmaceutical Engineering, South China Agriculture University, Guangzhou 510642, China; 2 Dept. of Life Science, Huizhou Univer

4、sity, Huizhou 516007, China; 3 Guangzhou University of Chinese Medicine, Guangzhou 510405,China)Abstract Objective: To study carboxylated multi-walled carbon nanotubes load HCPT preparation process and its intestine absorption characteristics. Method: To compare the adsorption capacity of oscillatio

5、n method, milling method and ultrasonic method, and choose the best one for HCPT-MWCNTs-COOH, then FIR, UV spectroscopy to the characterization, HPLC 稿件编号 基金项目 国家自然科学基金(30672669)作者简介 邓亚利( 1970-) ,女,博士,副主任药师,主要从事药物新剂型及新技术研究。Tel:13580399281;E-mail: 。通讯作者 *周莉玲,女,教授,博士生导师。 E-mail:。2spectroscopy to its c

6、ontent . The isolated everted intestine model was used to study the absorption in different regions of rat intestine(duodenum,jejunum,ileum,colon). The samples were collected at different time and determined with HPLC. Result: Ball milling method with frozen for preparing HCPT-MWCNTs-COOH was the be

7、st one. Its FIR and UV spectroscopy were different with HCPT or MWCNTs-COOH and its content were 12.5 g mg-1. The intestine absorption rate constant (Ka) increased along with HCPT concentration. The Ka had no significant difference between different regions of intestines(duodenum,jejunum,ileum,colon

8、), 150.9,92.7,148.9 and 183.0 ngcm-2h-1 respectively. Conclusion The dissolubility and absorption of HCPT-MWCNTs-COOH are better than HCPT. And it shows passive diffusion process. Key Words: Carboxylated carbon nanotubes; HCPT; isolated everted intestine model; intestine absorption羟基喜树碱(HCPT)是从我国内地特

9、有植物喜树的皮、果实中提取得到生物碱类抗癌药物,对治疗多种恶性肿瘤具有显著疗效 1。HCPT 是一种黄色粉末或结晶性粉末,不溶于水,极微溶于甲醇和无水乙醇,易溶于稀碱溶液。国内常用剂型为 HCPT 钠盐,其代谢较快,半衰期短;钠盐注射液不稳定,见光易分解,使疗效下降、不良反应增加。剂型研究方向为增加溶解性,实现对肿瘤组织的靶向性和缓释性,如微球、纳米粒、缓释片、脂质体等。马氏等制备了羟基喜树碱的环糊精包合物,突破了传统增加溶解度会破坏活性内酯结构这一难题 2。本研究以羧基化碳纳米管为载体,负载 HCPT。碳纳米管中空的圆柱状管体结构,功能化修饰后具有小分子药物、蛋白和基因转运的潜能,使所载生物

10、大分子更容易跨越细胞膜进入细胞核,发挥治疗疾病的作用 3。作为一种新型的药物载体,目前比较普遍的载药方法是共价连接和物理吸附。共价连接是利用化学反应使药物连接在碳纳米管上,药物的化学结构发生变化,可能会降低药效甚至出现副作用。而物理吸附则是利用碳纳米管大的比表面积优势,先将用生物大分子或极性小分子修饰的碳纳米管分散于溶剂中,同时将载送药物用溶剂溶解后,两者以一定比例混合,放置数小时或数天,挥干溶剂即可。物理吸附可以保持药物原有的结构,药物进入人体后也可维持原有的药效,也不会因结构的改变出现不必要的副作用。因此,物理吸附被认为是较为理想的载药方式 4,5。本研究以羧基化碳纳米管为载体,采用物理吸

11、附的方法制备负载物,并对其进行体外肠吸收试验,以考察负载物吸收速率,预测负载物在体内吸收情况,为羧基化碳纳米管作3为新型给药载体材料提供借鉴 6,7。1 材 料1.1 药品与试剂HCPT 对照品(供含量测定用,中国药品生物制品检定所,批号:100526-200301) ;HCPT 原料(黄石黄抗药业有限公司提供) ;羧基化多壁碳纳米管(纯度大于 95%,CVD方法生产,购自深圳市纳米港有限公司)。甲醇为色谱纯,其余试剂均为分析纯。Krebs-Ringers 肠营养液配制:NaCl 7.8 g、KCl 0.35 g、NaH 2PO4 0.32 g、NaHCO 3 1.37 g、葡萄糖 1.4 g

12、(临用前加入)加水至 1 L。1.2 实验动物清洁级 Wister 大鼠,雄性 (25010) g,南方医科大学实验动物中心提供(合格证号SCXK(粤) 2006-0015)1.3 实验仪器及色谱分析系统美国 Waters 600-2998 型高效液相色谱仪(四元高压梯度泵、手动进样、柱温箱,2998PAD 检测器、 Empower Pro 工作站) ;电子天平(FA1004N,上海精密科学仪器有限公司) ;OM-ISP2 行星式球磨机(南京大学仪器厂) ;傅立叶变换红外光谱仪(Nicolet 6700,赛默飞世尔科技公司) ;紫外可见分光光度仪(UV2300,上海天美科学仪器有限公司) ;循

13、环水式真空泵(SHZ-D,巩义市英培予华仪器厂) ;恒温磁力搅拌器( 85-2,常州奥华仪器有限公司) ;台式高速冷冻离心机(TL-18M,上海市离心机械研究所)Waters Xbridge C18 柱(4.6 mm250mm,5 m) ;流速:1 mLmin-1,柱温:25 ,检测波长:266 nm;进样量:20 L;流动相:甲醇 -水 (48:52) (V/V);理论塔板数不少于 4000。2 方 法2.1 MWCNTs-COOH 对 HCPT 的吸附曲线分别采用振荡吸附法、超声吸附法、球磨吸附法,比较三种方法的饱和吸附量和吸附平衡时间,从而为选择载药方法提供依据。采用紫外分光光度计对各个

14、时间段的药液吸光度进行检测,利用标准曲线法计算各吸光度值。配制 32 gmL-1 的 HCPT 溶液(甲醇:二氯甲烷 1:1 溶剂) ,在 200 - 400 nm 波长范围内扫描以确定最大吸收波长。分别精密移取 10mL、8mL、6mL 、4mL、2mL 该溶液于 5个 10 mL 量瓶中,甲醇定容后,在最大吸收波长处测定吸光度,拟合浓度与吸光度的线性方程。4分别精密称取三份羧基化碳纳米管 50 mg,加入 208 gmL-1 HCPT 溶液(甲醇:二氯甲烷 1:1 溶剂) 30 mL 于具塞锥形瓶中,一份直接放入振荡器中振荡(温度为 25,振频为 116) ;一份超声 10 min 后放入

15、振荡器;一份放入球磨罐中球磨 10 min(液氮保护下590 rpmmin-1) ,球磨后倒入锥形瓶,再放入振荡器。三份样品分别在各个时间点抽取 2 mL 溶液,再补加 2 mL 混合溶剂。吸取的样品放入离心管中 12000 rpm 离心 10 min,精密吸取上清液 1 mL,稀释 10 倍后,测定吸光度,并计算药物在 t 时间点的药物浓度 Ct。按公式计算: Qt =V(C 0- Ct )/m。式中 Q t 是 t 时刻溶质被吸附剂吸附的量( gg-1) ,C 0 和 C t 分别是初始和 t 时间点溶液中 HCPT 的浓度(g L-1),V 是溶液体积( L), m 是用于吸附试验的 M

16、WCNTs-COOH 质量 ( g )。相平衡参数 K=Cs/Ce, Cs 是指单位质量的碳纳米管吸附HCPT 的量(mmolg -1),Ce 是指平衡时单位体积溶液中 HCPT 的量(mmolmL -1)8。2.2 HCPT-MWCNTs-COOH 的制备、表征及含量测定精密称取 HCPT 4 mg 超声溶解于 10 mL 甲醇:二氯甲烷( 1:1)混合溶剂中,备用。精密称取 50 mg 的 MWCNTs-COOH 置于球磨罐中,分 3 次加入药液,每次加入约 3 mL;液氮保护下 590 rpmmin-1 球磨 10 min。将球磨后的混合物收集于具塞棕色三角瓶中(避光操作) ,放入振荡器

17、中振荡 0.5 h(温度为室温,振频为 116) 。将未吸附的药液过滤掉;滤饼放入培养皿,将有机溶剂挥干后加入 10 mL 纯水,研磨 5 min 后置于离心管内离心1h(12000 rpmmin-1) 。将离心后的上清液进行冷冻干燥,即得负载物,进行红外表征、紫外表征。精密称取 10 mg 负载物混悬于 10 mL 甲醇:二氯甲烷( 1:1)混合溶剂中,超声 10 min 后混悬液在 12000 转下离心 4 小时,取上清液过 0.22 m 微孔滤膜,采用上述色谱条件测定 HCPT 含量。2.3 建立肠吸收样品 HPLC 测定方法2.3.1 对照品溶液的制备及线性关系考察配制 36.0 gm

18、L-1 的 HCPT 溶液(甲醇:二氯甲烷 1:1 溶剂) ,作为储备溶液。精密吸取储备液 2.0、4.0、6.0、8.0、10.0 mL 分别置于 10 mL 量瓶中(高浓度) ;精密吸取储备液 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL 分别置于 100mL 量瓶中(低浓度) ,加甲醇稀释至刻度,摇匀。高浓度、低浓度进样量分别为 5L 和 20L ,记录色谱图, 以浓度为横坐标,峰面积为纵坐标, 进行线性回归,即得高浓度、低浓度线性方程 9。2.3.2 专属性、精密度、稳定性考察分别对 HCPT 对照品、空白肠营养液、肠透过后样品进样,观察在 HCPT 出峰处有无5干扰以考察专属性。将配

19、制好的对照品溶液(36 gmL -1)1 d 内重复进样 5 次,连续进样 5 d, 进样量 5L,记录峰面积用于日内、日间精密度计算。 取十二指肠于 20 min 时的肠外翻样品,于 0,1,2,6,8 h 分别进样,记录峰面积以考察稳定性。2.4 肠吸收试验2.4.1 供试品溶液的制备负载物溶液的制备:精密称取负载物 76.82、115.03 、300.36 mg,加入至 50 mL 量瓶中,用约 30 mL 的 37的 K-R 肠营养液分散后,定容得高、中、低三个浓度溶液(按HCPT 计,为 19.21、28.76、75.09 gmL -1) ,备用。2.4.2 离体肠囊模型的肠吸收试验

20、大鼠随机分为 6 组,每组 4 只,实验前 15 h 禁食,自由饮水,20 %乌拉坦腹腔麻醉(5 Lg-1) ,待大鼠失去知觉后打开腹腔,分别迅速取出约 10 cm 长的十二指肠、空肠、回肠、结肠(十二指肠段从幽门开始,空肠段离幽门 15 cm 处开始,回肠段自盲肠上行 20 cm 开始,结肠段从盲肠后端开始,长度以试验结束后的实测值为准) 。小心将大鼠肠管同肠系膜剥离,放入 37 K-R 溶液中,冲洗,直到没有内容物流出,小心剥离肠段表面肠系膜和脂肪,冲洗干净后翻转,用手术线分别将翻转后的各肠段结扎成 10 cm 长的小囊,十二指肠、空肠、结肠、回肠的囊内分别加入 0.5、1.5、0.8、2

21、.3 mL 的 K-R 肠营养液平衡。5min 后,将翻转小肠囊分别放入 4 个装有 8 m L 相同药物浓度的含药 K-R 肠营养液且维持 37 恒温水浴的玻璃试管中,并持续通氧及二氧化碳混合气体以保持离体肠活性。分别在 20、40、60、80、100、120 min 时间点,用针管分别吸取各个肠囊中内液 0.2 m L 置于 0.5 m L 的 Ep 管内作为样品;肠囊中补加等体积、新鲜且 37 恒温的 Krebs-Ringers 肠营养液(0.2 m L) ,继续试验。样品处理方法:离体肠外翻样品在 4条件下 13000 rmin-1,离心 20 min,取上清液,氮气吹干,加 60%甲

22、醇 0.2 mL 溶解,用 0.22 m 滤膜过滤,取续滤液 20 L 进样,记录峰面积。试验结束后吸取试管内药液,测定其浓度。被考察的肠段剪开,测量其长度(L)和内径(r) ,计算药物肠吸收速率常数(Ka ) 。2.4.3 数据处理按(式一)计算不同浓度下 AC 各个时间点的单位肠管面积累积吸收量 Q:6(式一)ACivnQ12.0式中,Cn:第 n 个取样点测得的药物浓度( gmL-1) ;Ci:第 i(i=n-1 )个取样点测得的药物浓度(gmL -1) ;A :肠管面积;V 为肠囊中加入的肠营养液体积。以 Qn 对 t做曲线,并对曲线中的直线部分进行回归,求出直线斜率,计算药物肠吸收速

23、率常数(Ka) (g cm-2h-1) 。数据以 SPSS 13.0 对数据进行分析,各组间数据比较采用单因素方差分析,P0.05认为具有统计学意义。3 结 果3.1 MWCNTs-COOH 对 HCPT 的吸附曲线紫外扫描的最大吸收波长为 265 nm(见图 2) ,确定为检测波长。紫外分光光度法的线性方程 y=0.0235x+0.0131(r=0.9996) ,表明浓度在 6.4032.0 gmL -1 间吸光度与浓度线性关系良好。振荡法、超声法、球磨法三种处理方法的相平衡参数 K 分别为468.1、471.2、690.8。吸附曲线如图 1 所示,吸附量依次为球磨法超声法震荡法。图 1 三

24、种方法的吸附曲线图3.2 HCPT-MWCNTs-COOH 的表征及含量测定负载物的紫外波长扫描图(图 2)可知,HCPT 的最大吸收波长在 215 nm 与 265 nm 处,而负载物在 250nm 处;比较 HCPT 原料、羧基化碳纳米管与负载物的红外图谱(图 3)可知,红外图谱发生了明显的改变,HCTP 在 1500-1750 cm-1 的三个尖峰消失,并且在 1500-400 cm-1 指纹区也发生改变。采用高效液相色谱法测定负载物含量为 12.50 gmg-1。7图 2 紫外扫描图 图 3 HCPT-MWCNTs-COOH 红外图谱3.3 建立肠吸收样品 HPLC 测定方法3.3.1

25、 线性与范围以峰面积(A)对浓度(X,g mg-1)进行回归,得到高浓度和低浓度的线性方程分别为:A=33680x+1887.3( r=0.9998)与 A=134715x+448(r=0.9996) ,表明药物量在 36 -180 n g 之间与 7.2-36 n g 之间均与峰面积呈良好的线性关系。3.3.2 专属性、精密度、稳定性考察按照 1.3 项下色谱系统,得到 HCPT 对照品、空白肠营养液、样品的 HPLC 图(见图4) ,可知在 HCPT 出峰位置无干扰,分离度及峰型较好,HCPT 的保留时间在 16.49 min。计算得到 HCPT 日内及日间峰面积 RSD 分别为 1. 0

26、2%、1. 16% ,结果表明仪器精密度良好。稳定性考察实验,HCPT 的离体外翻肠囊法样品峰面积 RSD 为 1. 56% ,表明样品在 8 h 内稳定性较好。A BC 图 4 离体外翻肠囊法中 HCPT 的 HPLC 图A. 样品;B. 对照品;C. 空白肠营养液3.4 离体外翻肠囊法试验 8实验结果见表 1,以零级拟合较好,决定系数(R 2)均达到 0. 9 以上。斜率即为单位面积单位时间内的肠吸收速率(Ka) ,各肠段的 Ka 随着浓度的增加而增加,表明吸收机制为被动扩散。分别对不同浓度下各个肠段的吸收速率常数作单因素方差分析,以 P 0.05,统计结果表明各个肠段的吸收速率均无显著性

27、差异,说明负载物中的 HCPT 在小肠内不存在特殊的“吸收窗” 。十 二 指 肠00.050.10.150.20.250.30.350.40.450.50 0.5 1 1.5 2 2.5t/h吸收量/gcm-2高 浓 度中 浓 度低 浓 度空 肠00.050.10.150.20.250.30.350.40 0.5 1 1.5 2 2.5t/h吸收量/gcm-2低 浓 度中 浓 度高 浓 度回 肠00.050.10.150.20.250.30.350.40.450.50 0.5 1 1.5 2 2.5t/h吸收量/gcm-2低 浓 度中 浓 度高 浓 度结 肠00.050.10.150.20.2

28、50.30.350.40.450.50 0.5 1 1.5 2 2.5t/h吸收量/gcm-2低 浓 度中 浓 度高 浓 度图 4 HCPT 浓度对各个肠段吸收速率的影响表 1 HCPT 不同质量浓度下各肠段的吸收速率常数 Ka( s,n=4,gcm -2h-1) x肠段 浓度gmL-1回归方程 R219.21 Q=0.042 0 t + 0.027 8 0.982 228.76 Q=0.058 2 t + 0.030 2 0.983 0十二指肠75.09 Q=0.150 9 t + 0.078 1 0.983 019.21 Q=0.024 3t + 0.016 4 0.990 528.76

29、Q=0.037 8 t + 0.023 9 0.989 9空肠75.09 Q=0.092 7 t + 0.064 4 0.992 519.21 Q=0.039 2 t +0.019 2 0.970 9回肠28.76 Q=0.060 4 t + 0.029 6 0.973 0975.09 Q=0.148 9 t+ 0.077 7 0.963 219.21 Q=0.047 8 t +0.004 6 0.973 528.76 Q=0.0726 t + 0.0085 0.971 2结肠75.09 Q=0.183 0 t+ 0.020 5 0.962 54 讨论4.1 关于负载物的制备工艺振荡法、超声法

30、、球磨法三种处理方法的相平衡参数、相平衡时间表明,球磨法负载量高,达平衡时间短;超声法与球磨法的达平衡时间相当,约为 30 min,但负载量小;振荡法达到相平衡需要更多时间,其载药量在平衡后与超声法相当。究其原因可能是,在负载药物时,碳纳米管常缠绕在一起,不同打开缠绕的方法,裸露的管壁面积不同,故而载药量不同。球磨的机械力大,使纠缠在一起的碳纳米管易于充分展开;同时在液氮保护下的冷冻球磨,碳纳米管的脆性增强,更利于截断碳纳米管,使药物更容易地吸附到管壁上。超声方法利用超声波的空化作用及辐射传播的高频波,使液体高速往复振动,从而使混悬在液体里面的碳纳米管分散开,与球磨法相比,效果较差。而震荡吸附

31、,在药物吸附前没有打开纠缠在一起的碳纳米管,故吸附量最小。4.2 关于羧基化碳纳米管提高 HCPT 水溶性HCPT 油水均不易溶的特点,增加其水溶解度成为需要解决的主要问题。利用羧基化碳纳米管的中空结构、水溶性,将 HCPT 制备成负载物后,增加其水溶性并提高固有结构的稳定性,使不溶于肠营养液的 HCPT,制成负载物后能溶于肠营养液,并提高了肠透过速率,预示其体内胃肠道给药吸收良好,可以制备成口服制剂。 5 结 论冷冻球磨法因机械力强,增加碳纳米管脆性而易于截断,故在羧基化碳纳米管负载HCPT 制备工艺中采用,红外光谱、紫外光谱表明负载物制备成功。负载物增加了 HCPT的溶解性,其肠吸收速率(

32、Ka)提高。羧基化碳纳米管可以作为难溶性药物的载体材料,制备成胃肠道给药系统。参考文献1 代鲁平, 宋春霞, 邵先祥, 张 耀. 抗癌药物喜树碱类衍生物的研究进展J. 中国药学杂10志, 2010,45(23):1813.2 马学琴, 董 琳, 李国姗, 付雪起艳. 环糊精的包合作用对羟基喜树碱活性内酯结构的保护J. 中国新药杂志, 2010,19(14):1270-1274.3 Ji SR, Liu C, Zhang B, et al. Carbon nanotubes in cancer diagnosis and therapy J, Biochimica et Biophysica A

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