1、1副猪嗜血杆菌的分离与鉴定李晓华 *杨小燕 郑新添 戴爱玲 李改娜（福建龙岩学院生命科学学院 预防兽医学与生物技术福建省高等学校重点实验室 福建省人畜寄生与病毒性疫病防控工程技术研究中心福建龙岩 364000）摘要：从福建省龙岩市l例临床症状、病理剖检变化疑似副猪嗜血杆菌病的患病猪的关节液中分离到1株革兰氏染色阴性可疑菌株，经卫星现象、生化鉴定等实验室诊断，进一步以副猪嗜血杆菌的16 S rRNA 基因设计特异性引物进行PCR鉴定，确定该分离菌为副猪嗜血杆菌。药敏试验结果表明，分离株对环丙沙星、氨苄西林、阿米卡星、庆大霉素、氟苯尼考、磺胺类等药物敏感；对阿莫西林、诺氟沙星有抵抗力。关键词：副嗜
2、血杆菌；分离鉴定；药敏试验Isolation and Identification of Haemophilus parasuisXiaohua-Li xiaoyan-Yang xintian-Zheng ailing-Dai gaina-Li1. College of Life Sciences, Longyan University, Longyan, Fujian Province 364000, PR China2. Key Laboratory of Preventive Veterinary Medicine and Biotechnology, Longyan Universit
3、y, Longyan, Fujian Province 364000, PR China3. Engineering Research Center for the Prevention and Control of Zoonosis，Fujian Province 364000, PR ChinaAbstract：A covey of swine whose clinical symptoms looked like Haemophilus parasuis disease were checked by lab technologiesResearch as bacteria observ
4、ation，cultural characteristics and biochemical properties of Haemophilus parasuis were doneAccording to the sequence of bacterium l6S rRNA，special primers were designed for PCR amplification. The results showed that the strain was tentatively identified as Haemophilus parasuisThe drug sensitive test
5、s showed：the strain was sensitive to 环丙沙星、氨苄西林、阿米卡星、庆大霉素、氟苯尼考、磺胺类等药物敏感；对阿莫西林、诺氟沙星Key words：Haemophilus parasuis；isolation and identification; drug sensitive test李晓华(1968、8) ,女,福建长汀人，高级实验师，主要从事实验室管理及动物疫病防控研究。2基金项目：福建省科技厅创新平台建设项目（FJ200812） 福建省科技计划项目（2008N2005） *通讯作者3猪副嗜血杆菌病(Haemophilus parasuis，Hps)又称
6、“革拉瑟氏病”(Gllissers Disease)，是由副猪嗜血杆菌( Haemophilusparasuis)引起的一种以多发性浆膜炎和关节炎为特征的疾病 1。该菌寄生在健康猪鼻腔等上呼吸道内，主要通过空气直接接触传播，其他传播途径如消化道等亦可传播 2。主要影响 24周龄的猪，感染高峰为46 周龄的猪 3，发病率在10%15% ，严重时病死率可达50% 。随着规模化养殖和养殖密度的增加，近年来，该病的发病率和死亡率均呈上升趋势，成为危害规模化养猪场最严重的细菌性疾病之一，给养猪业造成巨大的经济损失。2008年10月，福建龙岩某规模化猪场58周龄的保育猪发病严重,临床症状主要表现为精神沉郁
7、、食欲减少，体温升高40-41,流鼻涕,腹式呼吸,被毛粗乱，消瘦、关节肿大，病猪不愿站立，跛行，病程达4个多月，发病率40%。剖检病变主要表现为体内有水肿、充血、血液不凝,呈暗红色,全身脏器多数有出血斑点,膀胱粘膜和肾皮质点状出血,喉、会咽斑状出血,胸腔内有大量淡红色液体、纤维性渗出物;心包有大量纤维素性渗出物，似菜花状；肺脏呈纤维素性胸膜肺炎,腹腔内有大量透明黄褐色渗出液；关节腔内充满黄色浑浊液。怀疑猪副嗜血杆菌感染而致，随机采集病料进行病原分离鉴定及药敏试验。1 材料与方法1.1 材料1.1.1 病料采自福建省龙岩市某猪场疑似Hps 发病仔猪的肺脏、心血、关节积液、心包液、气管。1.1.2
8、 培养基普通琼脂培养基、鲜血琼脂培养基、巧克力琼脂培养基由实验室配制、胰蛋白胨大豆琼脂（TSA）培养基购于青岛海博公司；0.005%NAD 巧克力琼脂培养基、SS 培养基、麦康凯培养基购于北京陆桥技术有限责任公司；烟酰胺腺嘌呤二核苷酸（NAD）购于成都贝斯特试剂有限公司1.1.3 生化微量鉴定管H2S、蔗糖、麦芽糖、乳糖、半乳糖、山梨醇、甘露醇、尿素酶、赖氨酸、鸟氨酸、苯丙氨酸、葡萄糖、D- 核糖、葡萄糖酸、柠檬酸盐均购自杭州天和微生物试剂有限公司。1.1.4 药敏试纸：强力霉素、阿莫西林、磺胺-6-甲氧嘧啶、环丙沙星、氨苄西林、头孢噻呋钠、阿米卡星、恩诺沙星、诺氟沙星、卡那霉素、庆大霉素、氟
9、苯尼考、复方治菌磺、 林可大观、磺胺间甲氧嘧啶、泰妙菌素、泰乐菌素等药敏纸片由实验室自制。1.1.5 PCR 反应试剂：如 Taq DNA 聚合酶 (5IU/L)、蛋白酶 K、dNTPs，均由宝生物(大连)有限公司提供，-20保存。1.1.6 引物设计与合成参照 Simone Oliveira 等 9的报道合成引物：上游引物 P1：5-GTGATGAGGAAGGGTGGTGT-3,下游引物 P2：5-GGCTTCGTCACCCTCTGT-3，预扩增片段大小为 821bp。引物由上海生工生物工程有限公司合成。1.2 方法1.2 1 细菌的分离培养 无菌取送检的疑似患病猪的肺脏、心血、心包液、气管
10、和关节积液，划线接种于巧克力培养基和 5%新生牛血清 TSA 培养基,置于 37恒温培养箱中，烛缸培养 24-48h，观察结果。1.2.2 细菌形态及生化特性检查1.2.2.1 细菌形态学检查 挑取 TSA 平板上生长的疑似菌落涂片，革兰氏染色镜检，观察细菌的形态特征。1 2.2.2 细菌培养特性 挑取 TSA 平板上生长的单菌落，分别接种于含 0.005%NAD 的兔鲜血琼脂培养基平板、5%新生牛血清 TSA 培养基平板、鲜血琼脂培养基平板、巧克力琼脂培养基平板、麦康凯培养基和普通培养基平板中，置于 37恒温培养箱中，烛缸培养 24-48h。观察细菌的生4长情况。1.2.3 卫星试验 在两个
11、不含 V 因子的兔鲜血琼脂平板上接种可疑菌株，一个平行划线接种两行金黄色葡萄球菌，另一个作对照。在培养箱中 37烛缸培养 48 h，观察结果。1.2.4 生化鉴定 将分离所得可疑菌株的纯培养物分别接种于 H2S、蔗糖、麦芽糖、乳糖、半乳糖、山梨醇、甘露醇、尿素酶、赖氨酸、鸟氨酸、苯丙氨酸、葡萄糖、D-核糖、葡萄糖酸、柠檬酸盐微量生化鉴定管中，每支生化管中同时加入 1L 牛血清和 1LNAD 的（V 因子）置于 37恒温培养箱，烛缸培养 24-48h,观察结果。接触酶试验：挑取单菌落在一洁净的玻片上，滴加 30%的过氧化氢，30s 内观察反应结果。1.2.5 PCR 检测1.2.5.1 细菌 D
12、NA 的提取挑取单菌落进行亚克隆培养，用灭菌的双蒸水小心刮洗菌苔,置于1.5mL离心管中。12000rpm离心30s, 弃上清，保留细胞沉淀；加入567LTE悬浮沉淀，用等体积酚氯仿异戊醇(2524 1) 抽提 ,，使两相完全混合，冰浴10分钟。12000rpm离心10分钟，吸取上清液，等体积氯仿异戊醇(24 1)再抽提1次，至溶液中有絮状的DNA 沉淀出现；将DNA 沉淀转移到1mL70% 乙醇中洗涤，65 干燥箱中干燥2 分钟。用50-100LTE缓冲液( 含20g/mLRNase) 溶解DNA沉淀，即为试验所需模板，4保存备用。12.5.2 PCR鉴定以上述方法提取得到的菌株DNA为模板
13、,将P1、P2等比例混合，PCR反应体系为50L:10 Taq Buffer5L, 10mol/LdNTP2L,Template2L,5U/LTaqDNA聚合酶1L, H2O36L，上、下游引物(浓度均为10 molL)各1 L，反应条件为94 5min；94 30s, 58 30s, 72 1min,30个循环;72 7min。 PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳,观察结果。1.2.6 药敏试验无菌棉签蘸取分离菌的菌悬液,涂布接种于含 NAD 及新生犊牛血清的 TSA 平板上,然后把做好的药物纸片用无菌镊子分别平贴于培养基表面,于 37CO 2 培养箱中培养 24h,测量抑菌环直径并判定结果。判
14、断标准为：抑菌圈直径小于 15 mm 的为不敏感，1520 mm 的为中度敏感，20 mm 以上的为高度敏感。2 结果2.1细菌的分离培养取关节液划线接种的巧克力培养基上出现无色、透明的小菌落,接种于普通培养基不生长。接种于TSA 平板，可见有针尖大小、圆形、光滑湿润、无色透明、边缘整齐的小菌落生长。2.2细菌的形态学检查取分离所得可疑菌落涂片，革兰氏染色后在光学显微镜下见到革兰氏阴性的短杆状或球杆状小杆菌，以纤细杆状居多。 2.3培养特性该菌在普通琼脂平板、麦康凯培养基中均未见生长，在鲜血琼脂平板、巧克力平板上生长不好，在 TSA 平板、NAD 鲜血琼脂平板上生长良好。表 1 细菌培养特性T
15、able 1.The Cultural Characteristics of the isolatied strains培养基 生长情况 菌落形态普通培养基 -麦康凯培养基 -SS培养基 -5鲜血琼脂培养基 + 极少数无色透明、边缘光滑、湿润的针尖状大小菌落，传代后几乎不生长巧克力琼脂培养基 + 无色透明、边缘光滑、湿润、针尖状大小的菌落，传代后几乎不生长0.005%NAD的鲜血琼脂培养基 + 无色透明、边缘光滑、湿润的菌落，菌落呈针尖状大小，边缘整齐含5%新生牛血清和0.005%NAD TSA培养基 + 无色透明、边缘光滑、湿润的菌落，菌落呈针尖状大小，边缘整齐，大量的菌落连成一片注：“+”
16、生长良好；“+”生长一般；“+”生长但生长较差；“+”生长但极难生长； “-”不长。2.4 卫星现象试验观察结果可见，越接近葡萄球菌所形成的菌株，菌落越大、越多，离葡萄球菌愈远，菌落越小、越少，甚至不生长，呈现出明显的“卫星现象” 。2.5生化鉴定结果分离株生化鉴定结果见表2。表 2：分离菌生化鉴定结果Table 2.The biochemistries identification of isolatied strains项目ItemH2S蔗糖Saccharose麦芽糖Maltobiose乳糖lactose半乳糖Galactose山梨醇Sorbitolum甘露醇Manciol尿素酶urase
17、接触酶Catalase结果Result - + + - - - - + +项目Item赖氨酸lysine鸟氨酸ornithine苯丙氨酸L-Phenylalanine葡萄糖DextrosD-核糖Ribose葡萄糖酸盐gluconate柠檬酸盐citrate结果Result - - - + - - -注:“- ”阴性;“+ ”阳性。 Note:“ + “positive ,“ - “ negative.2.6 PCR反应结果以提取的总DNA产物作为模板,用PCR方法扩增，经1%琼脂糖凝胶电泳检测，在凝胶成像系统中观察，发现被检菌株有约821bp的特异性条带，其大小与预期的扩增片段大小相符。如图2
18、:图2：PCR检测结果M：DNA 标准 DL 2000；1:分离株PCR产物；2：阴性对照Figure 2.Results of PCR identification10050075010002000250M 1 2821bp6M: DNA Marker DL 2000; 1: Results of PCR amplification ;2.7分离菌药敏试验结果显示，该菌对环丙沙星、卡那霉素、强力霉素、头孢噻呋钠、氨苄西林、庆大霉素高敏，对泰乐菌素、磺胺-6-甲氧嘧啶中敏，对林可大观、泰妙菌素、诺氟沙星 磺胺间甲氧嘧啶低敏，见表3。表 3:分离菌药敏试验结果药物 抑菌圈直径/mmDrugs D
19、iameter环丙沙星 Ciprolfloxacin 32卡那霉素 Kanamycin 30强力霉素 Doxycycline 26头 孢 噻 呋 钠 Ceftiofur Sodium 24氨 苄 西 AmpicillinSuppositories 23庆大霉素 Gentamicin 22阿米卡星 Amikacin 20泰乐菌素 Tylosin 18磺 胺 -6-甲 氧 嘧 啶 Sulfamonmethoxine 17林 可 大 观 Spectinomycin Hydrochloride 14泰妙菌素 Tiamulin 12诺氟沙星 Norfloxacin 10磺 胺 间 甲 氧 嘧 啶 Sul
20、famonomethoxine 6注：抑菌直径 d20mm 为高度敏感;15mmd20mm 为中度高敏; d15mm 为不敏感。3 讨论与小结3.1 根据分离菌的菌落形态特征、镜检结果、生化特性及卫星现象结果，初步鉴定为副猪嗜血杆菌，以HPS的16SrRNA中的基因序列设计合成引物，进行PCR扩增，成功扩增出长约821bp的16sRNA基因片段,说明分离菌株为HPS。该菌在普通琼脂平板、麦康凯培养基中均未见生长，在鲜血琼脂平板、巧克力平板上生长不好，在TSA平板、NAD鲜血琼脂平板上生长良好。说明5%新生牛血清TSA培养基是HPS的理想培养基。3.2 该菌的药敏结果显示，对环丙沙星、卡那霉素、
21、强力霉素、头孢噻呋钠、氨苄西林、庆大霉素高敏，对泰乐菌素、磺胺-6-甲氧嘧啶中敏，对林可大观、泰妙菌素、诺氟沙星 磺胺间甲氧嘧啶低敏，与高鹏程、吕素芳等的研究结果基本相同。3.3 本研究根据 Hps 的 l6 S rRNA 序列设计引物进行 PCR 扩增，通过热裂解法和 CTABA 裂解法对 PCR 扩增条件进行优化，成功扩增出了 821bp 片段，所建立的 PCR 检测方法不仅可从分离培养物中对 Hps 进行鉴定，而且可以直接对病料进行 PCR 检测，在临床诊断中具有实用性。3.4 近年来，副猪嗜血杆菌病已成为影响世界养猪业的典型细菌性疾病，危害日益严重，已经在全球范围影响着养猪业的发展，成
22、为断奶前后仔猪和保育猪头号杀手，死亡率高达50一9，给养猪业带来的危害与经济损失已不容忽视。国内在北京、黑龙江、辽宁、河南、湖南、宁夏、湖北、江苏、上海、安徽、广西、浙江、江西、山东、福建等省市都均有发生，损失惨重【6】 。本研究借助传统方法和特异性高的PCR方法鉴定副猪嗜血杆菌病，为深入研究猪HPS感染的快速诊断及有效防治提供了实验依据。3.5 由于猪副嗜血杆菌对抗生素的耐药性问题，目前大多采用疫苗对猪副嗜血杆菌病进行防制，然而，猪副嗜血杆菌的血清型较多，且不同血清型之间无交叉保护力，若不知当地流行的血清型而随便应用商品化疫苗，猪副嗜血杆菌病就不能得到有效控制。目前已知的副猪嗜血杆菌至少可7
23、分为15 种血清型，还有20%以上的分离株无法定型 【9-10】 。而且HPS 具有明显的地方性特征，不同地区流行的血清型有可能不同，因此，对闽西地区猪副嗜血杆菌进行分型鉴定，可为该地区猪副嗜血杆菌病的防制提供科学依据，具有重要的理论指导意义。参考文献：1Riising H J.Prevention of Glassers diseaset hrough immunity to Haemophilus parasuis J.Zent ralbl Veterinarmed B,1981,28(8):630-638.2张卓然,倪语星.临床微生物学和微生物检验（第3 版） M.北京: 人民卫生出版社
24、,2003：177-181.3B.E.斯劳特,S.D.阿莱尔,W.L.蒙加林,等.猪病学(第八版)M.北京:中国农业大学出社,2000：491- 498. 高鹏程，储岳峰等，副猪嗜血杆菌病原的分离鉴定与药敏试验，动物医学进展J，2007，28(12)：2729 吕素芳 ，郭广君等，副猪嗜血杆菌Shandong2007株的分离与鉴定，动物医学进展 J，2007，28(9)：30336蔡旭旺，刘正飞，陈焕春，等副猪嗜血杆菌的分离培养和血清型鉴定 华中农业大学学报，2005，24(1)：55587姚火春兽医微生物学实验指导( 第2版)【M1北京：中国农业出版社2002：35378陈溥言兽医传染病学n1 北京：中国农业出版社2006：264-2659尹秀风，姜平，邓雨修，等副猪嗜血杆菌的分离与鉴定J 畜牧与兽医。2004,36(7)：728110毋安雄，应小飞，陶益，等副猪嗜血杆菌的研究进展fJI 中国畜牧兽医，2005，(1 1)：485011高丰，罗毅，成军，等猪副嗜血杆菌感染的诊断与防治L丌动物医学进展。2002。23(61：101102
