1、药理学概论实验讲义 药理学概论实验讲义 一、药理学实验设计的基本知识 1. 实验设计的基本原则 药理研究的目的是通过动物实验来认识药物作用的特点和规律，为开发新 药和评价药物提供科学依据。由于生物个体之间存在着差异性，且实验过程也 存在系统误差和操作误差，因此要取得精确可靠的实验结论，必须进行实验设 计。进行实验设计必须遵循三条原则，即重复、对照、随机。 重复是保证实验结果可靠的重要措施之一。重复具有两方面的含义，即重 现性和重复性。重现性就是精确可靠的实验结果，应能在相同条件下重复出现。 重复性就是实验要有足够的次数或例数。由于个体差异和实验误差，仅根据一 次实验或少数样本所得的结果，往往难
2、以下结论。在适当的范围内重复愈多， 则放可靠。究竟用多少动物或多大样本进行药理实验，是研究者遇到的首要问 题。样本过少不行，过多则增加实际工作中的困难，也不符合经济的原则，而 且单纯加大样本量也不能完全排除偏差，所以，在实验设计时对样本大小的估 计应在保证结论可靠的条件下确定最小的例数。 在实验研究中，为消除个体差异和各种无关因素对实验结果的影响，须设 对照组。对照应符合可比原则，除实验药物或处理因素的差别外，其他一切条 件(包括实验对象的种局、年龄、性别、体重和实验方法、仪器、环境、时间等)应 力求一致，这样才能从实验组与对照组比较中得出药物作用的准确结论。对照 一般可分为如下两类。 自身对
3、照。即在同一个体观察给药前后某种观测指标的变化，或者两种 药物前后交叉比较，这样可以减少个体差异的影响。 组间对照。即在实验中设若干平行组进行比较，或分不给药物(或不加处 理)的空白对照组及已知药物的标准品对照组。前者最常用，后者便于与已知药 物比较，并可检验实验方法及技术的可靠性。 随机分组的目的是使样本的差异平均分配到各组，而不受实验者主观因素 或其他偏性误差的影响。例如，动物分组时先被抓到的往往是不活泼考，后抓 到的是活泼者，前者分入同一组，后者分入另一组，这样得出的结论是不可靠 的。随机分组的方法很多，如原始的抽签法和目前最常用的随机数目表法等都 可减少实验者主观因素及其他因素所造成的
4、实验误差。 2. 实验记录的格式 实验前认真研究将要进行实验的目的，药物浓度、给药剂量、动物种类、 分组、体重、性别，观察指标，实验条件，操作步骤等要求。为了保证实验有 条理、按秩序、不遗漏重要观察项目，并有利于结果的统计分析，在实验前必 须拟定实验记录内容。 实验记录一般应包括： 动物的种类、体重、性别、编号、分组情况。 实验药物的来源、种类、批号、剂型、浓度、剂量、给药途径。 观察指标的变化、实验进程、步骤及操作方法的详细记录和原始记录描记 图纸的收集保存。 常用实验如镇痛实验结果记录见表 11。 表 1-1 镇痛实验结果记录表 给药后痛阈值及提高率%组 别 动物 编号 体重 g 给药量
5、ml 给药前痛 阈值 s 15min % 30min % 45min % 对照组 实验组 3. 实验结果的整理与实验报告的书写 3.1 实验结果的整理 实验结束后，应对原始记录进行分析和整理。药理学实验结果有计量资料 (如血压值、心率、瞳 7L 大小、体温变化、生化测定数据和作用时间等)、计数 资料(如阳性反应或阴性反应数、死亡数存活数等)、记录曲线、心电图、脑电 图、照片和现象记录等。凡届计量资料，均应以正确的单位和数值作定量表示， 不能笼统提示。必要时应对其进行统计处理，以保证结论的可靠性。为使结果 一目了然，尽可能将以上有关数据制成一表格或绘成统计图，以便进行直观地 阅读分析相比较。制作
6、表格时，一般将观察项目列在表内左侧，由上而下逐项 填写，而将实验中出现的变化，按照时间顺序，由左至右逐格填写。绘图时， 应在坐标的纵坐标和横坐标上列出数值刻度，表明单位，一般以纵坐标表示反 应强度，横坐标表示作用时间或药物剂量，并在图的下方注明实验条件，如果 实验的作用不是连续性变化，也可用柱形图表示。凡有曲线记录的实验，应及 时在曲线因上标注说明。对实验记录中较长的曲线记录，可选取出现典型变化 的段落，剪下后粘贴保存。这里需要注意的是，必须以客观的态度来进行裁剪 工作，不论预期内的结果或预期外的结果，均应保留原始记录。 3.2 实验报告的书写 实验报告要求结构完整、条理分明、文字简练、书写工
7、整，措辞应注意科 学性和逻辑性。 实验报告一般包括如下几项内容。 实验题目：言简意赅，20 字以内。 实验目的：实验的意义所在，要做什么， 实验动物：种类、性别、体重、数量。 实验药品：名称、浓度、剂量。 实验仪器：主要使用仪器，也包括手术器材、玻璃器材等的数量、条件。 实验方法：要详细、步骤清晰，使别人能看懂、能重复。如果实验方法 临时有变更或者由于操作技术方面的原因影响观察结果时应作简要说明。 实验结果；可用文字，也可用表格或图示多种方法表示，是实验报告中 重要的部分需保证其真实性。应随时将实验中观察到的现象在记录木上记录， 实验告一段落后立即进行整理。不可单凭记忆或将原始记录搁置很久之后
8、再做 整理，这样易致实验结果遗漏或错误。实验报告上一般只列经过归纳、整理的 结果，但原始记录也应保存备查。 讨论：最能显示同学学习水平的一项，应针对实验个人所观察到的现象 与结果，联系课堂讲授的理论知识，进行分析和讨论。要根据实验内容洋细讨 论实验结果说明了什么，是否达到了实验目的要求和观察到了设计的现象；各 项指标说明了哪些问题；实验成功或失败的原因，应吸取的经验教训。讨论不 可脱离实验结果空谈理论，讨论中要判断实验中出现的是否为与理论相一致的 预期结果，如果属于非预期结果，则应分析其产生的可能原因。 结论：用简短的一两句话，总结实验是否达到预期的目的，实验观察药 物作用的结果有无预期的药理
9、作用。实验结论是从实验结果归纳而得出的概括 性的判断，也是对本实验所能说明的问题、验证的概念或理论的简要总结。在 实验结论中不必重述具体实验结果，末获实验证实的理论分析不能写入实验结 论中。 二、常用实验动物的选择、捉持和给药方法 药理实验常用的动物有小白鼠、大白鼠、豚鼠、家兔、猫和犬，某些实验 还可以用青蛙、蟾蜍以及鸽、鸡、猴等。由于各种试验的观察目的和内容不同， 对动物的选择也有不同。下面介绍几种常用动物的选择、捉拿固定法和给药途 径。 （一）小白鼠 小白鼠是药理实验常用的一种动物，常用于药物的筛选、LD 50ED50的测定、 中枢神经系统药试验、抗炎免疫药试验、避孕药、抗肿瘤以及抗衰老药
10、试验等。 常用体重 1822g。 1捉拿方法 右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼）上面，轻向后拉其尾， 用左手拇指和食指捏住其头部皮肤及双耳，将小白鼠固定在掌中，使其腹部朝 上，然后以第四指和小指夹住鼠尾。 2给药途径： （1）经口给药法： 口服（PO）：将受试药物放入饲料或溶于饮用水中，由动物自由提取的一种 方法。缺点是摄入剂量不够准确。 灌胃(IG)：将小鼠固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔， 沿上腭插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再另插，以免穿破食道或误入气 管。灌注量为 0.10.3ml/10g 体重。 （2）皮下注射(SC)：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一手注射，
11、注射量 为 0.10.3ml/10g 体重。 （3）肌内注射(IM)：多注射于后肢股部肌肉，每侧不超过 0.1ml. （4）腹腔注射（IP）：左手固定小鼠，右手持注射器，从下腹部外侧进针约 35mm，呈 450角刺入腹腔，注射量 0.10.2ml/10g 体重。 （5）静脉注射（IV）：将小鼠至于固定筒内，使尾巴露在外面，用 7075%酒 精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入 4550 OC 温水中。待尾部左右侧静脉扩张后，左 手拉尾，右手进针。注射量不超过 0.5ml/只。 （二）大白鼠 用途与小白鼠相似，常用作抗关节炎药物试验、血压测定、利胆药实验等。 常用体重 150200g。 1捉拿方法：基本上
12、同小白鼠。将其放在粗糙物上，右手轻拉其尾，左手 中指和拇指放在大鼠左右前肢腋下，食指放入颈部，使大鼠伸开两前肢，便能 将其握住。 2给药途径：灌胃、腹腔注射、皮下注射、静脉注射均同小白鼠，给药量 为小白鼠的 23 倍。 （三）豚鼠 豚鼠对组胺很敏感，研究平喘药和抗组胺药时常选用。常用体重 300500g。 1.捉拿方法：豚鼠性温和，不咬人。捉拿是以拇指和中指从豚鼠背部伸入 腋下，另一手放在臀部，托起即可。 2.给药途径： （1）皮下、肌肉及腹腔注射。方法基本同小白鼠，给药量分别为 0.51ml，0.30.5ml、24ml。 （2）静脉注射：可选用后腿掌外侧的静脉或外颈静脉进行注射。采用前法，可
13、 由一人抓持豚鼠并固定一条后腿，另一人剪去注射部位的毛，酒精棉球涂擦使 血管扩张。以小儿头皮针头刺入血管推注药物。注射量通常为 24ml。 （四）家兔 家兔常用作观察药物对呼吸、心脏、血管、肠肌运动的影响，或用作解热 药试验及热源检查。雌兔常用作避孕药研究及观察药物对子宫的影响，以用于 长期毒性试验。常用体重为 1.52.5kg。 1.捉拿方法：一手抓住颈背部皮肤，轻轻将兔提起，另一手托其臀部，或 将其置于固定箱内。 2.给药途径： （1）灌胃：二人合作。一人坐好，将兔夹于两腿之间，左手紧握双耳、固定头 部，右手抓住两前肢。另一人将开口器横放于兔口中，压在舌头上面，用一 8 号导尿管从开口器中
14、央孔插入口内，再慢慢插入食道和胃。为避免误入气管， 可将胃管外口端放入清水中，如无气泡出现，即证明在胃内。然后灌入药液， 给药量通常为 10ml/kg。 （2）耳缘静脉注射：用酒精棉球涂擦兔耳或手指弹兔耳，使局部血管扩张。以 手指在耳根部压住静脉，然后注入药液。注射量为 2ml/kg。 （3）皮下、肌肉、腹腔注射方法与鼠类基本相同，最大给药量分别为 0.5ml，1.0ml 和 5.0ml/kg。 （五）犬 犬常用于慢性实验，如高血压试验治疗、胃瘘、肠瘘，用于观察药物对冠 状血流的影响、利尿药实验以及长期毒性实验等。常用体重为 515kg。 1.捉拿方法：一人用长柄钳式捕狗夹夹住犬颈，另一人将犬
15、嘴绑住。绑嘴 方法是将绳带从嘴下面绕上来，在鼻子上面打一结，再将绳带绕到最下面打一 结，然后将绳带拉到耳后颈部打结固定。 2.给药途径： （1）腹腔注射：将犬夹住，用力将头、颈部压在地上。一人提起一侧后肢并将 药液注入腹腔。 （2）静脉注射：多从后肢外侧小隐静脉或前肢皮下头静脉注射。以手或橡 皮管把静脉向心端扎紧，使血管充盈，剪毛，酒精消毒，针向近心端刺入静脉。 回抽针栓，如见回血，表示针头在静脉内，即可推注药物。 三、实验内容 实验一 不同给药剂量、途径对药理作用的影响 1.1 不 同 剂 量 对 药 物 作 用 的 影 响 【 目 的 】 观察不同剂量的戊巴比妥钠对小白鼠作用的差异。 【
16、原 理 】 药 物 剂 量 的 大 小 决 定 血 药 浓 度 的 高 低 ， 血 药 浓 度 又 决 定 药 理 效 应 ， 因 此 药 物 剂 量 决 定 药 理 用 强 弱 。 【 实 验 材 料 】 1 动 物 ： 小 鼠 3 只 。 2 药 品 ： 0.2戊巴比妥钠溶液(0.1m1/10g)、 0.4戊巴比妥钠(0.1m1/10g)、 0.8戊巴比妥钠(0.1m1/10g)。 3 器 材 :鼠 笼 、 大 烧 杯 、 普 通 天 平 、 1m1 注 射 器 。 【 实 验 方 法 】 取 小 鼠 3 只 ， 以 苦 味 酸 溶 液 涂 毛 作 不 同 记 号 ， 称 其 体 重 ，
17、观 察 小 鼠 正 常 时 的 活 动 情 况 。 然后 1 号鼠腹腔注射（i.p）0.2戊巴比妥钠溶液 (0.1m1/10g) ；2 号鼠 i.p 0.4戊巴比妥钠(0.1m1/10g)；3 号鼠 i.p 0.8 戊巴比妥钠(0.1m1/10g)， 给药后观察并比较小鼠活动情况。翻正反射消失及 恢复时间，以此计算药物作用维持时间。记 录 各 鼠 所 出 现 药 物 反 应 的 严 重 程 度 和 发 生 快 慢 ， 并 比 较 各 鼠 有 何 不 同 。 【 结 果 整 理 】 记录并比较三只小白鼠出现的反应，分析不同给药剂量对药物效应的影响 组 别 动物编号 体重 （g） 给药时间 翻正反
18、射 消失时间 潜伏期 翻正反射 恢复时间 作用维持 时间 【注意事项】密切观察三只小白鼠先后出现的反应并记录各鼠出现药物反应的 严重程度 【 思 考 题 】 1. 药 物 的 剂 量 和 作 用 的 关 系 对 临 床 用 药 有 何 重 要 意 义 ? 2.决定药物作用潜伏期长、短的因素有哪些？ 3.根据药代动力学方式分析，增加药物剂量能否成比例的延长作用时间？ 1.2 不同给药途径对药理作用的影响 【目的】观察两种不同给药途径对硫酸镁作用的影响。 【原理】硫酸镁注射给药产生中枢抑制、抗惊厥和降压作用，口服给药可产生 导泻和利胆作用。 【实验材料】 1.动物：小鼠 4 只，体重 1822g，
19、雌雄各半。 2.药品：20硫酸镁溶液； 饱和苦味酸溶液。 3.器材：鼠笼，天平，注射器，小鼠灌胃针头与注射针头各 1 个。 【实验方法】取小鼠 4 只，称重、标记、分组，其中一组灌胃给药 20硫酸镁 溶液(0.2ml10g)，另一组皮下注射等量药液，分别置于小鼠笼中，观察两组 小鼠的表现。包括动物全身活动情况、骨路肌张力、呼吸频率、颈部肌肉张力 等改变情况，并记录结果。 组 别 动物编号 体重 （g） 给药途径 给药量 （ml） 给药前表现 给药后表现 【注意事项】灌胃时动作要轻柔，切勿损伤食道及胃壁，并注意勿将药液灌入 气管。 【思考题】 1.同一药物相同剂量以不同给药途径为什么会出现不同的
20、药物反应？ 2. 影响药物经过皮下或肌肉注射吸收的因素有哪些？ 实验二 药物血浆半衰期及表观分布容积的测定 酚红的血药浓度测定及药动学参数的计算方法 【目的】 观察静脉注射酚红后， 不同时间内血浆药物浓度的变化。 掌握血浓 测定方法， 血浆半衰期（t1/2）及表观分布容积（Vd）的计算。 【原理】酚红(PSP)为指示剂,在碱性环境中呈现紫红色。PSP 静脉注射后，在 体内不 代谢，其消除主要由肾脏近曲小管分泌.因此可通过比色测定不同给药时间血浆 中 PSP 的光 密度值,定量计算血中 PSP 的浓度. 【实验材料】 1.动物：健康家兔一只，雌雄不拘，体重 22.5kg 2.药品：1、2、4、8
21、、16umolL-1 酚红溶液，0.6%酚红溶液，稀释液，1N 氢 氧化钠 溶液，75%酒精，肝素钠 1000u/ml，生理盐水， 3.器材：分光光度计，离心机，兔台，兔固定绳，手术器械一套（十把） ，丝线， 注射器（5ml） ，针头（5-6 号） ，抗凝试管，离心试管，动脉夹，擦镜纸，滤纸， 定量加样器。 【实验方法】 1、麻醉并固定：取健康家兔一只，称重， 3%戊巴比妥钠 1ml /kg 耳缘静脉注 射麻醉，仰卧位固定在兔台上。 2、手术：纵向切开颈部正中皮肤，分离颈下组织，找到气管，在气管一侧分离 出颈总动脉，从颈总动脉下穿两线待用。由耳缘静脉注射肝素钠 1ml /kg，结 扎远心端，近
22、心端用动脉夹夹住，两端之间留 2cm 距离，用眼科剪在远心端朝 近心端方向呈 45 度角剪小口，然后朝向心方向插入塑料管，推进 12cm 结扎 并固定，塑料管用止血钳夹住，松开动脉夹。 3、取空白血：自动脉导管取血约 1 ml，置于编号的干燥抗凝试管中，轻摇混 匀。 4、给药及取血样：从耳缘静脉注射 6ml/kg 0.6%酚红溶液，给药后 2、5、10、20 和 30 分钟分别取血约 1ml，置于编号的干燥抗凝试管中，轻摇 混匀。 5、离心和测定：各取定量血样于编号离心试管中，以 3000 转/分离心 10 分钟， 分别取血浆 0.1ml，加入清洁编号试管内，加稀释液各 2ml，摇匀后静置 5
23、 分 钟，以给药前血样做空白对照调零，于分光光度计 560nm 波长处进行比色测定， 记录其光密度值。将给药后不同时间的光密度输入计算器，计算出不同时间酚 红的血浆浓度。 6、制作酚红溶液 1、2、4、8、16umolL -1标准曲线（由老师率先绘制） 实验结果及分析： 以浓度为横坐标，以光密度为纵坐标，绘制标准曲线，回归方程。 以血浆药物浓度的对数值为纵坐标，时间为横坐标绘制时量曲线，一级消除动 力学的时量关系呈直线。 该直线的方程式为 logCt=lgCO-k/2.303t 药物血浆半衰期 T1/2=0.693/k(单位：h 或 min) Vd=A/C0（A 为给药总量） 用 FX-360
24、0P 计算器，采用直线回归的运算程序，计算出不同时间酚红的血 浆浓度。 血样药浓记录表 采血时间 光密度 Ct lgCt 【注意事项】 1、分离颈总动脉时，要把神经分离开，结扎的时候不能结扎神经。 2、用取液器取上清液的时候，小心谨慎，不要取出血。 3、离心时应将取血试管平衡后对称置入。 4、禁止用手接触比色皿的光面，若有液体，只能用擦镜纸。 【思考题】叙述 t 1/2及 Vd 的定义及意义？ 附 磺胺类药物在正常与肾衰家兔体内的药代动力学参数测定 目的和原理 (1)了解磺胺类药物在正常与肾功能衰竭的动物体内随时间变化的代谢规律，并掌握药 代动力学参数的拟合与计算方法。(2)掌握药代动力学对于
25、临床用药的意义和重要性。磺胺 类药物能与某些试剂发生反应生成有色物质，通过比色法可以对磺胺类药物血浓度进行定 量分析。磺胺类药物在酸性环境下使其苯环氨基(一 NH2)离子化生成铵类化合物(一 NH3+ )， 与亚硝酸钠发生重氮化反应生成重氮盐(一 NN 一)。该化合物在 525 nm 波长下比色，其 光密度与磺胺类药物浓度成正比。 实验材料 健康成年家兔，体重 2.53.5 kg；10磺胺二甲嘧啶或以等浓度的磺胺嘧啶、磺 胺噻唑、磺胺甲基异嗯唑代替，7.5三氯醋酸，0.1SM 2标准液，0.5亚硝酸钠， 05麝香草酚(用 20NaOH 配制)，0.3肝素(用生理盐水配制)，20乌拉坦溶液或 1
26、盐酸普鲁卡因，蒸馏水，lHgCl 2溶液，0.9NaCl 溶液；721 型分光光度计、离心机、 婴儿秤、手术器材 1 套、动脉夹、硅胶管、家兔手术台、注射器(5 ml、10 ml、20 mi)及 针头、吸管(0.1 ml、0.2 ml、0.5 ml、1 ml、2 ml、5 m1)、吸球、离心管、试管架、半 对数坐标纸、玻璃记号笔、药棉、纱布、具有回归功能的计算器或进行程序处理的微型计 算机。 实验方法 1.家兔肾功能损伤模型的建立 实验前 1 d 进行(1820 h)，取家兔 2 只，称重后 1 只皮下注射 1HgCl 2溶液 1.2 mlkg 体重，造成急性肾功能衰竭动物模型；另 1 只则在
27、 相同部位注射等量的生理盐水作为正常对照。 2.药动学实验 1.血中药物浓度测定 参见表 1 流程图。 1）试管：取 5ml 离心管 11 支，5ml 试管 22 支，用玻璃粉笔分别标记“0” 、 “1”、 “2”“3”、 “4”、 “5”、 “6”、 “7”、 “8”、 “9”、 “10” 2）加三氯醋酸：取标记好的离心管，在各管中分别加入 7.5%三氯醋酸溶液 2.7ml。 3）麻醉固定动物：全麻或局麻均可。取正常或肾功能损伤的家兔 1 只(实验前禁食 12 h，不禁水) ，记录体重和性别，耳缘静脉注射 20乌拉坦 (3mlkg 体重)麻醉，仰位固 定于家兔手术台上，或以 1的盐酸普鲁卡因
28、做手术区浸润麻醉。 4）手术：可选用颈总动脉或股动脉。手术区剪毛，切皮约 6 cm，钝性分离皮下组 织和肌肉，分离出动脉 23cm，在其下穿 2 根丝线，结扎远心端，保留近心端。 5）耳缘静脉注射 0.3肝素 1 mlkg 体重。 6）插管：用动脉夹夹住动脉近心端，再于两线中间的一段动脉上剪一 V 形切口，插 入硅胶管(已肝素化)，用线结扎牢固，以备取血用。 7）药前取血：打开动脉夹放取空白样 0.4ml，分别放入 0 号管(对照管)和 1 号管 (标准管)各 0.2 ml，充分摇匀以防凝血。取下硅胶管，用肝素溶液冲洗干净，重新插入颈 总动脉备下次取血用。 8）给药：自耳缘静脉注射 10SM
29、2 3mlkg，记时。 9）药后取血：于药后 1、5、10、15、30、45、60、90min、150 min 同 7）法取血， 分别放入“2”至“11”号离心管中（取血前弃掉 0.2ml 左右血液）摇匀。标准管中加入 0.1SM 2标准液 0.1 ml，其余各管加蒸馏水 0.1 ml 摇匀。 10）离心血浆：将离心管放入离心套管中，两两配平后，对位放入离心机中， 15003 000 rmin 离心 5 min。 11）取上清液：将上清液 1.5ml 从离心管依至对应的 5ml 试管中。 12）显色：用 1ml 加液器向各试管（包括标准管）中加入 0.5亚硝酸钠 0.5 ml 摇 匀，再加入
30、0.5麝香草酚 1 ml 摇匀后为橙色。 13）比色：以“0”号试管液调零，于 525nm 波长处用 721 型分光光度计测定“0” 号至“10”号试管及标准管液的光密度值（D） 。 结果整理及分析 表 1 磺胺类药物血药浓度测定的步骤 试管 7.5%三氯醋酸 血样 蒸馏水 1.5%亚硝酸钠 0.5%麝香草酚 光密度 浓度 （ml） （ml） （ml） （ml） (ml) (gml) 给药前 2.7 0.2 0.1 0.5 1 给药后 1 min 2.7 0.2 0.1 0.5 1 5 min 2.7 0.2 0.1 充分 0.5 1 10min 2.7 0.2 0.1 摇匀 0.5 1 15
31、 min 2.7 0.2 0.1 离心 0.5 1 30 min 2.7 0.2 0.1 15 min 0.5 1 45 min 2.7 0.2 0.1 取上 0.5 1 60 min 2.7 0.2 0.1 清液 0.5 1 90 min 2.7 0.2 0.1 1.5 0.5 1 150 min 2.7 0.2 0.1 0.5 1 标准管 2.7 0.2 标准液 0.1 0.5 1 1.计算各时间血中的药物浓度：根据同一种溶液浓度与光密度成正比的原理，可用空 白血标准管浓度及其光密度值求算出样品管的磺胺药物浓度。公式如下： 样品管光密度(OD)标准管光密度(OD)样品管浓度(gml)标准管
32、浓度( gm1) 样品管浓度(gml)样品管光密度(OD)标准管光密度(OD)(标准管浓度( gm1) 将数据填入上表中。 2.作图：在半对数坐标纸上以时间(t)为横坐标，实测浓度的对数值(1gC)为纵坐标， 绘制 SM2的药时曲线，确定其房室模型。 3.计算药时曲线方程式： 以 logC 对 t 作直线回归，得方程：logC=a+bt 4.计算药代动力学参数 k、C 0、t 1=/2、Vd、CL。 公式： C0 =log-1a k=-2.303b t1=/2=0.693/k Vd=X0/C0 （X 0为用药量） CL= VdK 注意事项 1.每次取血前要先将插管中的残血放掉。 2.每吸取一个
33、血样时，必须更换吸量管，若只用一支吸量管时，必须将其中的残液用 生理盐水冲净。 3.将血样加到三氯醋酸试管中应立即摇匀，否则易出现血凝块。 4.可用静脉血取代动脉血，但静脉取血的缺点是有时不充盈而取不出血。可以用灯泡加 温、涂抹二甲苯等方法刺激静脉使之充盈。另外，取血时间无保证易使结果不准确。 5.取血及各种液体的量要准确 6.每加一种试剂后必须立即混匀，所加试剂的次序不得颠倒，否则影响结果。 思考题 1一次静脉注射后的药时曲线能反映哪些与药代动力学有关的基本概念? 2房室模型的涵义是什么? 3说明实验中所求的药动学参数的意义 实验三 药物对家兔血压及心律的影响 【目的】观察肾上腺素（Adr）
34、对家兔血压的作用及异丙肾上腺素影响；学习利 用氯化钡制造动物心律失常模型，观察利多卡因抗心律失常作用 【原理】肾上腺素单用具有升压效应，而 受体阻断剂能翻转其升压作用。氯 化钡能促进心脏浦肯野纤维钠离子内流，抑制钾离子外流，促进 4 相自动除极， 使自律性增强，故常用于制造各类心律失常模型。利多卡因属于 IB 类抗过速 型心律失常药，可选择性作用于浦肯野纤维，抑制钠离子内流，促进钾离子外 流，降低自律性，消除折返激动。临床上常作为防治急性心肌梗塞、室性心律 失常的首选药物。 【实验材料】 1.动物：家兔，2Kg 左右 2.药品： 3%戊巴比妥钠，0.001%Adr，1000u/ml 肝素，0.
35、2%氯化钡，0.5%利多 卡因，0.005%异丙肾上腺素，生理盐水。 3. 生物信号处理采集系统，针形电极，器材：心电图机(或生物信号采集系统),动 物秤，兔台，兔绳，注射器 5ml，针头 5-6 号，烧杯。 【实验方法】 1、麻醉并固定：取家兔一只，称重，戊巴比妥钠 30mg/kg 耳缘静脉注射麻醉， 仰卧位固定于兔台。 2、 手术： 纵向切开颈部正中皮肤， 钝性分离皮下组织， 暴露并分离一侧颈 总动脉约 2cm，从颈总动脉下穿两线，耳缘静脉注射肝素 1ml/kg，结扎远心端， 近心端用动脉夹夹住，用眼科剪朝近心端方向剪小口，然后插管接压力换能器， 结扎固定，放开动脉夹，记录家兔正常的血压
36、3、心电图：根据仪器要求，将针形电极插入相对应导联肢体皮下，II 导联 （右上肢、左下肢，右下肢地线） ，记录正常心电图 II 导联图形。 4、给药：从耳缘静脉给于 0.001% Adr 0.1ml/Kg，观察家兔的血压有何变化， 待血压恢复正常以后，给于 0.001% 异丙肾上腺素 0.1ml/Kg，再观察家兔的血 压有何变化，同时比较两种药物对血压的影响。 待血压恢复正常以后，给予 0.2%氯化钡 2ml/Kg，观察家兔的心律有何变化， 待心律失常出现以后，立即静脉给予 0.5%利多卡因 1ml/kg,1 中 2 分钟内注完， 观察心律有何变化，持续观察 5 分钟。 编辑好实验记录，打印并
37、分析结果。 【注意事项】1、给予戊巴比妥钠、氯化钡应缓慢推注 2、动脉插管应结扎牢固 3、家兔出现心律失常后，应马上给予利多卡因 4、电极不可插入肌肉，以免肌电干扰。 实验四 延胡索和醋制延胡索镇痛作用的比较（扭体法） 【目的】学习扭体法镇痛实验方法；观察延胡索和醋制延胡索镇痛作用的差异。 【原理】将小鼠腹腔注射醋酸刺激小鼠腹部产生疼痛反应（扭体），通过测定 小鼠疼痛潜伏期（最早扭体出现时间）及计数扭体次数和镇痛率，判定药物有 无镇痛作用。 【实验材料】 1.动物：小鼠，体重 18 22 g。 2.药品：延胡索水煎醇沉液 4g/ml、醋制延胡索水煎醇沉液 4g/ml、生理盐水。 3.器材：1m
38、l 注射器、鼠笼、天平、小鼠热板仪。 【实验方法】 小鼠称重标记，随机分组，置鼠笼中，分别灌胃给药，第 1 只给予延胡索 水煎醇沉液，第 2 只给予醋制延胡索水煎醇沉液，第 3 只给予生理盐水作为对 照。给药后 30min，各鼠腹腔注射 0.8%醋酸溶液 0.2ml/只，观察注射后 20min 内出现扭体反应（伸展后肢，腹部收缩内凹、臀部抬高）次数，以及出现扭体 反应的平均时间，计算其镇痛百分率。 对照组扭体次数用药组扭体次数 镇痛百分率= 100% 对照组扭体次数 【结果】 延胡索镇痛实验结果 组别 动物数 剂量 最早扭体出现时间（min） 20 分钟内扭体次数 镇痛率% 对照组 延胡索组
39、醋制组 1、 将延胡索水煎醇沉组与生理盐水组扭体次数进行组间 t 检验，并比较各 组平均值，确定延胡索有无镇痛作用； 2、 将醋制延胡索水煎醇沉组与生理盐水组扭体次数进行组间 t 检验，并比 较各组平均值，确定延胡索有无镇痛作用； 3、 将延胡索水煎醇沉组与醋制延胡索水煎醇沉组扭体次数进行组间 t 检验， 并比较各组平均值，确定炮制前后药物镇痛作用的差异； 【注意事项】 1、灌胃量要准确。 2、给药后时间应至少达到 30min，然后腹腔注射醋酸。 3、腹腔注射醋酸后应准确计时，确保观察时间精确（20min）。 【思考题】根据实验结果讨论炮制前后延胡索产生镇痛作用差异的原因。 实验五 生大黄和制
40、大黄对小白鼠排便时间和数量的影响（炭末法） 【目的】 观察生大黄和制大黄对小鼠肠道炭末推进时间、数量的影响。 【原理】 中药不同制剂和配伍，其作用往往有不同。生大黄可使肠蠕动加速， 粪便排出快，成形差；制大黄因其致泻成分分解破坏，作用较弱，因而粪便排 出慢、少而成形。运用色素流动法，以黑色炭末为指示剂，以排黑粪时间，粪 便性状和数量为指标，即可直接反应不同大黄制剂泻下作用的强弱。 【实验材料】 1.动物：小自鼠。 2 器材：小鼠灌胃针头，1ml 注射器、钟罩，滤纸，鼠笼，台秤、棉签、记时钟、 镊子。 3.药品：生大黄水煎液 1g/ml(含炭末 0.1g/m1)， 制大黄水煎液 1g/ml(含炭
41、末 0.1g/ml，炭末生理盐水混悬液 0.1g/m1，苦味酸。 【实验方法】 取禁食 20h 体重相近的小白鼠 3 只(腹泻者剔去)， 随机分成 3 组每组 1 只，苦味酸标记。各组分别灌服上述 3 种炭末混悬液 0.3m1/10g。各鼠分置于 铺有滤纸的小鼠笼内进行观察，记录小鼠排黑便的时间、性状和数目，以及粪 便沾染肛门情况。连续观察 1h，综台全实验室结果，进行比较。 【结果】按结果记录分析并填表。 生大黄和制大黄对小白鼠排便时间和数量的影响（XSD） 组别 动物数 （只） 剂量 （g/kg） 开始排黑便 时间（min） 1 小时内排 黑便数 黑便性状 生理盐水 制大黄 生大黄 【注意
42、】 1.吸药液前，应将药液摇匀，以保证药量及炭末量准确。 2.排黑便的计数和计时，以开始排出黑便为准。 3.计数黑便时，应随时将小鼠排出的已计数的黑便清除，以免影响记数的准确 性。 4.实验小鼠在禁食与实验过程中应让其饮水，否则影响实验结果。 附 （1）生大黄制剂的制备：取生大黄 100g，砸成小块后，以水浸没。冷 浸 24h 后过滤，40水浴浓缩至 1g/ml。 （2）制大黄制剂的制备：取制大黄 l00g，加水煎沸 1.5h 以上，过滤，药液水浴浓缩至 1g/ml。 思考题 1.为何不同制剂的大黄使小鼠排便时间和排便数不同？临床应用大黄致泻应注 意什么？ 2.比较大黄和大承气汤的泻下作用，并
43、解释导致的结果。 实验六 茵陈蒿汤对大鼠胆汁分泌的影响 【目的】学习大鼠胆总管插管和胆汁引流的方法，观察茵陈蒿汤对大鼠胆汁分 泌的影响。 【原理】 肝脏分泌的胆汁经胆总管流入十二指肠，胆汁是一种重要的消化液， 含有多种化学成分，主要有胆酸、胆固醇、及胆红素等。胆汁的分泌排泄与黄 疸的形成有密切关系。从胆总管收集胆汁可以反映胆汁的分泌与排出。茵陈蒿 汤具有清湿热，退黄疸功效，使胆汁流出增加。本实验可动态观察药物对肝分 泌胆汁的影响。 【实验材料】 1.动物：大鼠，250300g。 2.药品：茵陈蒿汤水煎醇沉液 2g/ml(茵陈 60g、栀子 9g、大黄 9g 水煎成 36ml) ，生理盐水，0.
44、3%戊巴比妥钠。 3.器材：大鼠手术台，手术剪刀，头皮针，止血钳、眼科镊，注射器 （1ml，5ml） ， 纱布，药棉，丝线，天平。 【实验方法】 大鼠，称重，腹腔注射 0.3%戊巴比妥钠，仰位固定。上腹部剪 毛，上腹部切开皮肤约 3cm。通过胃幽门部及其相连的十二指肠可见开口于十 二指肠的胆总管，在胆总管下穿二根丝线。向胆总管内插入头皮针结扎固定， 可见淡黄色胆汁沿头皮针缓慢流出。计量正常胆汁流量 20min（ml/h，或滴数 /min） ；然后向胃内注入生理盐水或茵陈蒿汤,1ml/100g；每药均观察给药前 20min 及给药后 1,2,3,4h 胆汁流量（每分钟滴数或每 20 分钟毫升数）
45、 。 【结果】记录并比较不同药物给药前后对家兔胆汁流量的影响。 茵陈蒿汤对大鼠胆汁分泌的影响 组别 剂量 （g/kg） 胆汁流量（ml/h） 药前 药后 1h 2h 3h 4h 生理盐水 制大黄 生大黄 【注意】 1.胆总管引流胆汁的塑料管可用头皮针上的半透明塑料管制成。管的尖端剪成 斜口，离管口 23mm 处加热拉成稍细的颈部，以便接扎胆总管而固定之。 2.胆总管比较细，切勿用力拉牵引线而拉断，故操作必须细心轻巧。 3.胆总管切口应一次成功，正好剪断胆总管的 1/31/2。注意一定要剪断内膜， 使胆汁引流管插入内腔，见有胆汁流出便易插入导管。 思考题 分析中药茵陈蒿汤。 实验七 青皮和四逆散
46、对家兔肠平滑肌的影响 【目的】 掌握离体肠平滑肌的制备方法；观察药物对离体肠平滑肌的影响。 【原理】 多种动物的离体肠道在具有合适的存活环境就可以保持其自发性运动。 青皮有疏肝破气，消积化滞之功；四逆散能疏肝理气、调和肝脾。三者对家兔 肠平滑肌有明显解痉作用。 【实验材料】 1. 动物： 家兔（或豚鼠、大鼠） 。 2.药品： 青皮水煎液 1g/ml，四逆散水煎液 1g/ml（枳壳、芍药、柴胡、灸甘 草各 5g，共煎成 20ml） ，PH 均为 6 左右，氯化乙酰胆碱 1mol/L、组织胺 1mol/L、氯化钡 10mg/ml，台氏液等。 3. 器材： 麦氏浴槽（或离体器官恒温浴槽） 、生物机能
47、实验系统、张力换能器、 注射器等。 【实验方法】 1. 调节恒温浴槽装置，使泵出的水通过麦式浴槽周围保持恒温，麦氏浴槽内的 台氏液保持 36.50.5。 2. 调节生物信号系统：调零、定标（510 克） 、将张力换能器与生物机能实 验系统连接选择通道并调节张力换能器。 3. 离体肠平滑肌的制备。取 2kg 左右家兔一只，用木槌击枕骨致死，立即剖开 腹腔，取空肠和回肠上段，置入盛有充氧（5%CO2）的冷台氏液中。沿肠壁 分离肠系膜，用台氏液将肠内容物冲洗干净，将肠管剪成 22.5cm 的肠段， 肠管两端穿线结扎，一端系于通气钩上，然后轻轻放入恒温麦氏浴槽中，另 一端系于张力换能器上，加 0.51
48、 克负荷，连接记录仪。通氧气调节速度 为 12s 出现一个气泡，不能影响肠肌的自主舒缩运动。 4. 观察正常肠肌运动，调整麦氏浴槽内肠肌张力，使舒缩稳定后，描记一段肠 肌正常运动曲线，然后依次向浴槽中滴加各种药液。每次滴加药液前均应冲 洗肠肌 23 次，待舒缩恢复到用药前水平后再加入下组药液，描记舒缩曲 线。 5. 给药顺序为： （1） 青皮水煎液 0.20.5ml，观察并记录作用曲线后冲洗。 （2） 乙酰胆碱 0.20.5ml（112.510mol/L） ，当肠肌收缩显著时 即滴加青皮水煎液 0.21ml。待明显抑制时再滴加与前同剂量的乙酰 胆碱液。 （3） 加组织胺液 0.20.6ml（13）10mol/L，待收缩曲线明显 后即滴加青皮水煎液 0.5ml，待曲线稳定后再加入与前等剂量的组织 胺液。 （4） 加氯化钡液 0.20.5ml，待收缩曲线显著时即滴加青皮水煎液 0.51ml。待曲线稳定后再加入与前等剂量的氯化钡液。 （5） 按以上（1）（4）的顺序取另一段肠肌，观察四逆散水煎液对兔离 体肠肌
